Календула химический состав: Календула. Применение, описание, химический состав, противопоказания и лечебные свойства календулы

Содержание

Календула. Применение, описание, химический состав, противопоказания и лечебные свойства календулы

Красивые цветки календулы не только радуют глаз, но и являются ценным сырьем для фармацевтической промышленности

Описание

      Календула - название растений из семейства Астровых. Дикие и натурализированные представители рода произрастают повсеместно в странах Европы, Средиземноморья, Ближнем Востоке, Средней Азии, Южной Америке и Австралии. Многие виды календулы являются лекарственными растениями, наиболее популярным из которых является календула лекарственная.

Как лекарственное растение календулу выращивают на промышленных плантациях. Кроме медицинских целей ее используют в декоративных целях и кулинарии.

Свежие молодые листья календулы добавляют в салаты, супы, блюда из мяса, рыбы, паштеты, тушенные овощные блюда, или используют как приправу к разным блюдам. Также для ароматизации и окраски блюд используют высушенные язычковые цветы. Содержащийся в них пигментный краситель придает характерный оттенок сырам, маслу, супам, соусам, изделиям из теста и другим продуктам.

Химический состав

Цветки календулы содержат полисахариды, полифенолы, горечи (до 10%), смолы (3.4%), слизи (до 4%), органические кислоты, эфирное масло (0.002%), каротиноиды (до 3%), флавоноиды, фитонциды, сапонины, тритерпендиолы (арнидиол и фарадиол), гликозид календулозид, аскорбиновую и салициловую кислоту и алкалоиды.

В надземной части растения содержатся горькие (в том числе календен) и дубильные вещества, фитонциды, тритерпеновый сапонин, а также тритерпендиолы (арнидиол и фарадиол).

В семенах содержится жирные масла (в том числе лауриновая и пальмитиновая кислоты) и алкалоиды.

В корнях календулы обнаружен инулин и ряд тритерпеновых гликозидов, являющихся производными олеаноловой кислоты.

Лечебные свойства календулы лекарственной

Препараты календулы обладают противовоспалительными, ранозаживляющими, бактерицидными, спазмолитическими, желчегонными и мочегонными свойствами, кроме того они снижают рефлекторную возбудимость, оказывают успокаивающее действие на центральную нервную систему, ускоряют процессы регенерации тканей, повышают секреторную функцию печени и желудка, и способствуют улучшению состава желчи. Их широко применяют при сердечно-сосудистых заболеваниях, сопровождающихся повышенным сердцебиением, одышкой и отеками, язвенной болезни желудка и двенадцатиперстной кишки, гастритах; наружно - для лечения ран и ушибов, ожогов, обморожений, долго незаживающих язв, фурункулов, бородавок. В гинекологии препараты календулы используют для лечения эрозии шейки матки и трихомонадных кольпитов, а также в климактерический период.

Настой цветков календулы применяют в качестве ранозаживляющего, противовоспалительного, спазмолитического и желчегонного средства при колитах, энтероколитах, гастритах, язвенной болезни желудка и двенадцатиперстной кишки, а также воспалительных заболеваниях печени и желчных путей.

Препарат «Калефлон» (экстракт цветков календулы) обладает противовоспалительным и ранозаживляющим действием. Его назначают при острых и хронических гастритах, язвенной болезни желудка и двенадцатиперстной кишки.

Настойку календулы применяют при ангинах и воспалительных заболеваниях верхних дыхательных путей, гингивитах, молочнице у детей.

Мазь календулы применяют при порезах, ранах, ушибах, фурункулезе, ожогах, обморожениях, трещинах губ и незаживающих гнойных ранах.

Противопоказания

Препараты календулы противопоказаны людям с пониженным артериальным давлением, а также при их индивидуальной непереносимости.

 

Автор: Александр Кузнецов

Статья защищена законом об авторских и смежных правах. При использовании и перепечатке материала активная ссылка на портал о здоровом образе жизни hnb.com.ua обязательна!

лекарственное растение, применение, отзывы, полезные свойства, противопоказания, формула цветка

1. Государственная Фармакопея СССР. Одиннадцатое издание. Выпуск 1 (1987), выпуск 2 (1990).

2. Государственный Реестр лекарственных средств. Москва 2004.

3. Лекарственные растения государственной фармакопеи. Фармакогнозия. (Под ред. И.А. Самылиной, В.А. Северцева). – М., «АМНИ», 1999.

4. Машковский М.Д. «Лекарственные средства». В 2 т. - М., ООО «Издательство Новая Волна», 2000.

5. «Фитотерапия с основами клинической фармакологии» под ред. В.Г. Кукеса. – М.:Медицина, 1999.

6. П.С. Чиков. «Лекарственные растения» М.: Медицина, 2002.

7. Соколов С.Я., Замотаев И.П. Справочник по лекарственным растениям (фитотерапия). – М.: VITA, 1993.

8. Маннфрид Палов. «Энциклопедия лекарственных растений». Под ред. канд. биол. наук И.А. Губанова. Москва, «Мир», 1998.

9. Турова А.Д. «Лекарственные растения СССР и их применение». Москва. «Медицина». 1974.

10. Лесиовская Е.Е., Пастушенков Л.В. «Фармакотерапия с основами фитотерапии.» Учебное пособие. – М.: ГЭОТАР-МЕД, 2003.

11. Лекарственные растения: Справочное пособие. / Н.И. Гринкевич, И.А. Баландина, В.А. Ермакова и др.; Под ред. Н.И. Гринкевич – М.: Высшая школа, 1991. – 398 с.

12. Растения для нас. Справочное пособие / Под ред. Г.П. Яковлева, К.Ф. Блиновой. – Изд-во «Учебная книга», 1996. – 654 с.

13. Лекарственное растительное сырье. Фармакогнозия: Учеб. пособие / Под ред. Г.П. Яковлева и К.Ф. Блиновой. – СПб.: СпецЛит, 2004. – 765 с.

14. Носов А. М. Лекарственные растения. – М.: ЭКСМО-Пресс, 2000. – 350 с.

15. Здоровая кожа и растительные средства/ Авт.-сост.: И. Пустырский, В. Прохоров. – М. Махаон; Мн.: Книжный Дом, 200. – 192 с.

16. Специи и пряности. /Текст Я. Кибала – Издательство Артия, Прага, 1986. – 224 с.

Калорийность календула. Химический состав и пищевая ценность.

Химический состав и анализ пищевой ценности

Пищевая ценность и химический состав
"календула".

В таблице приведено содержание пищевых веществ (калорийности, белков, жиров, углеводов, витаминов и минералов) на 100 грамм съедобной части.

Нутриент Количество Норма** % от нормы в 100 г % от нормы в 100 ккал 100% нормы
Калорийность 1 кКал 1684 кКал 0.1% 10% 168400 г
Белки 0.3 г 76 г 0.4% 40% 25333 г
Углеводы 0.7 г 219 г 0.3% 30% 31286 г

Энергетическая ценность календула составляет 1 кКал.

Основной источник: Создан в приложении пользователем. Подробнее.

** В данной таблице указаны средние нормы витаминов и минералов для взрослого человека. Если вы хотите узнать нормы с учетом вашего пола, возраста и других факторов, тогда воспользуйтесь приложением «Мой здоровый рацион».

Календула: состав и полезные свойства

Цклитель Авиценна сказал, что у врача есть три «оружия» для лечения: слово, нож и растение. Календула была в арсенале лекарей в прошлые века, и до сих пор применяется для лечения в современной медицине.

Календула – красивый садовый цветок, хороший медонос и отличное лекарство.

Состав календулы

В ее состав входит эфирное масло, кислоты, смолы, альбумин, фитонциды и немного алкалоидов. Еще в ней есть сапонины и календен – горечь.

Семена насыщены жирным маслом, которое представлено кислотами и глицеридами. В химический состав входят и витамины: каротин и каротиноиды, а также аскорбиновая кислота.

Полезные свойства календулы

В медицинской практике и народной медицине о лечебных свойствах календулы известно давно. Растение применяют в виде мазей, полосканий, примочек, пластырей и спринцеваний.

Ноготки помогают заживлять раны, избавляют от фурункулов и подростковых прыщей. Календулой лечат экземы, отбеливают лицо, осветляя веснушки или пигментные пятна. Используют растение при лечении ожогов, трещин, ссадин, царапин, незаживающих ран и язв. Используют «ноготки»  в виде мазей и эмульсий при лечении ушибов, гангрены, сикоза и проблем с кожей.

Польза календулы настолько велика, что ее применяют при лечении злокачественных опухолей, при лихорадке, облысении и воспалении седалищного нерва. Ею лечат маститы, конъюнктивиты и гнойничковые заболевания.

Календула известна отхаркивающими, мочегонными и потогонными действиями. Лекарства из календулы применяют в качестве бактерицидного средства в борьбе со стафилококками и стрептококками, для полоскания горла при стоматите, ангине, фарингите и при проблемах в полости рта.

Она помогает при заболеваниях двенадцатиперстной кишки и язвенных поражениях слизистой желудка, при заболеваниях сердца и печени. Настой помогает людям, страдающим гипертонической болезнью и женщинам в период климакса.

Календула помогает при кашле, при камнях в мочевом пузыре, болезнях селезенки и спазмах желудка. В гинекологии ее используют в качестве спринцеваний: она лечит эрозию шейки матки.

Используется календула и при воспалениях прямой кишки: настои применяют в виде клизм при проктитах и парапроктитах. Для этого необходима 1 ч. л. настойки календулы и 1/4 стакана воды. При лечении, например, свищей, в сам «канальчик» свища вводят настой календулы и 3%-й раствор борной кислоты в равных пропорциях.

Растение помогает при одышке и отеках, при головных болях. Оно восстанавливает память, снимает раздражение, минимизирует боли в сердце и останавливает носовые кровотечения. Настойка из сока убирает боли. При приеме внутрь успокаивает и обеспечивает хороший сон, нормализует сердечный ритм и дыхание.

В Европе календулу применяют  для окрашивания сыров и масла. Растение используют в кулинарии, добавляют в блюда из тушеных овощей, салаты и супы.

Календула: лечебные свойства и противопоказания

Календула (ноготки) — не только завсегдатай цветочных клумб, но и признанное официальной медициной лекарственное растение, упоминание о котором можно найти уже в “травниках” XII века. Calendula officinalis — так по латинской классификации именуется календула, что явно указывает на ее лечебные свойства.

Цветочные корзинки календулы входят в официальный реестр лекарственного сырья во многих странах. Для промышленной заготовки сырья под выращивание ноготков отводятся огромные территории, и одна из первых плантаций была заложена по указу Петра Великого в окрестностях Санкт-Петербурга.

Сбор и заготовка лечебного сырья

В научной медицине для лекарственных нужд используются краевые лепестки цветков календулы, хотя народные целители считают, что применение целых цветочных корзинок не менее эффективно. Заготавливают соцветия в фазе полного распускания цветка. Сушку сырья проводят естественным путем, под навесами, защищающими от попадания прямых солнечных лучей, так как ультрафиолет разрушает биологически активные соединения. Допускается также применение искусственной сушки (температурный оптимум — 60 – 80 °C). Лечебные свойства календулы со временем утрачиваются (через 4 месяца содержание каротиноидов снижается примерно в 6 раз), поэтому более 1 года сырье не хранится.

Химический состав лечебного сырья

Цветочные лепестки календулы ценятся из-за содержания каротиноидов (15 видов). Основная часть каротиноидов сконцентрирована в язычковых лепестках, поэтому официальная медицина отдает предпочтение именно этому виду сырья. В состав соцветий календулы также входит 8 видов флавоноидов, содержание которых варьирует от 0,26 до 1%. Максимальная концентрация флавоноидов отмечается в оранжевых махровых сортах ноготков.

Народные целители в своей практике используют не только соцветия календулы, но также всю надземную часть, иногда и корни. В корнях календулы обнаружено 8 типов гликозидов, получивших название “календулозиды”. Надземная часть календулы, а особенно листья растения — богатый источник фитостеринов (11 типов, содержание в листьях — до 18%).

Кроме вышеперечисленных веществ, в растении обнаружено много других органических соединений, отличающихся высокой биологической активностью.

Фармакологические свойства календулы

Препараты календулы, как показали результаты серии экспериментов, обладают седативным и снотворным действием, в зависимости от дозировки. Календула подавляет активность большой группы вирусов, грибков и бактерий. Каротиноиды, флавоноиды и кумарины, входящие в состав календулы, способствуют быстрому подавлению воспалительных процессов, уменьшают болевые ощущения, активизируют процессы регенерации тканей. Фармацевтической промышленностью освоен ряд препаратов на основе календулы. Например, “Мазь карофиленовая”, которую применяют в качестве наружного средства при лечении дерматитов, трофических язв и пр. Препарат “Калефлон”, разработанный на основе флавоноидов календулы, зарекомендовал себя эффективным средством при лечении язвенной болезни желудка и 12-типерстной кишки, токсического гепатита и пр.

Препараты календулы успешно используются при лечении заболеваний сердечнососудистой системы, сопряженных с одышкой и отечностью.

Клинические испытания настойки календулы проводились профессором Хворовым. Испытуемые — женщины, страдавшие гипертонией разных стадий, в совокупности с различными нарушениями вегетативной нервной системы климактерического и постклимактерического характера: повышенная нервозность, мигрени, нарушения сна, одышка, сердцебиение и пр. Трехразовое употребление настойки в дозе 50 капель показало значительное улучшение самочувствия пациентов.

Препараты календулы находят применение в комплексной терапии ряда тяжелых заболеваний, сопряженных с дистрофическими изменениями тканей внутренних органов: заболевания селезенки, печени (в том числе и вирусные гепатиты), желудка и кишечника (колиты, энтероколиты и пр.). Как показала практика, календула снижает степень дистрофических изменений, что, в свою очередь, положительно отражается на результатах основного лечения.

В гинекологической практике календулу используют для спринцеваний в виде 2%-ного раствора настойки. Показания к применению: трихомонадный кольпит, эрозия шейки матки.

В проктологии (проктиты и парапроктиты) — клизмы (1 ч.л. настойки на 100 мл воды).

Лечебные свойства календулы в народной медицине

Народные врачеватели назначают препараты календулы внутрь в тех же случаях, что и представители канонической медицины. Что касается лечения накожного рака, то эффективность ноготков в этом случае часто ставится под сомнение, хотя врачи прошлого в этом не сомневались. По-видимому, тут необходимо учитывать, как объективные, так и субъективные факторы. Впрочем, в этом плане последнее слово еще остается за онкологами, которые подтверждают противоопухолевую активность лолиолида — лактона, входящего в состав цветков календулы. В научных кругах существует авторитетное мнение, что водно-спиртовые экстракты календулы оказывают канцеростатический эффект (тормозят развитие некоторых видов опухолей).

Масло календулы — испытанное высокоэффективное средство для лечения широкого спектра заболеваний, что неоднократно доказано не только народными целителями, но и представителями официальных кругов. Единственное, пожалуй, расхождение во мнениях — это технология приготовления препарата.

Масло календулы не защитит от развития полиартрита (в отличие от масла зверобоя), но способствует уменьшению опухания суставов и снижению ревматоидоподобного фактора.

Лечебные свойства календулы в гомеопатии

Не обошли вниманием календулу и гомеопаты — гомеопатический препарат Calendula применяется, как внутрь, так и наружно. Наружное гомеопатическое лечение назначается в случае рваных ран и язв голени (1 ч.л. настойки на 150 мл теплой воды — для компрессов и обмываний).

Препараты на основе календулы

Настой цветков. На 2 стакана кипятка — 2 ч.л. сырья, настоять четверть часа. Доза рассчитана на четырехкратный прием. Настой рекомендуется принимать во всех случаях, где уместно использование календулы. В ряде случаев рекомендуется принимать настой от 6 до 8 раз в день по 1 ст.л. при заболеваниях желудочно-кишечного тракта (гастриты, энтериты, колиты), болезнях желчевыводящей и мочеполовой системы (в том числе и при образовании камней). В гинекологической практике настой показан в случае болезненных менструаций — употребление препарата следует начинать за 1 неделю до предполагаемого начала менструального цикла.

Настойка краевых цветков. Залить 250 г цветков 100 мл водки, настаивать 2 недели, после чего отжать и перелить в склянку темного стекла. Хранить препарат в холодильнике. Принимать внутрь по 30 капель трижды в день. Для наружного использования исходную настойку разводят водой в пропорции 1:9. Наружно применяется для полосканий (тонзиллит, заболевания ротовой полости и горла, пиорея, гингивиты) и орошений (ожоги, ушибы, экзема). При лечении ангины полоскания проводят через каждые 1 – 1,5 часа (допускается совместный прием с сульфаниламидами и антибиотиками). Для лечения блефаритов необходимо утром и вечером смазывать веки. В неделю рекомендуется проводить процедуры по 3 – 4 раза. Испытания в клинических условиях (рецидивирующий чешуйчатый блефарит) показали, что курса лечения в 20 сеансов часто вполне достаточно для полного излечения.

Масло. Находит применение при лечении большого количества недугов наружного характера (раны, язвы, варикоз, дерматиты, экзема, импетиго, фурункулез, ожоги и пр.). Для приготовления препарата используется метод экстракции инертными растительными маслами (предпочтительно оливковое масло). На 100 мл масла необходимо 10 г краевых лепестков. Настаивать на солнце в склянке из коричневого стекла. Период настаивания — 21 день.

Мазь. Использование мази аналогично применению масла календулы. Готовят мазь путем смешивания сока цветков с ланолином или свиным нутряным жиром (1:10). Для приготовления мази можно использовать настойку (1 ч.л. на 50 г вазелина) или порошок цветков календулы (на 50 г вазелина — 10 г порошка).

Масляный экстракт. Этот лечебный препарат используется для орошения слизистой в случае хронического ринита (в дозе 1,5 мл). Орошение задней стенки глотки практикуется при лечении хронического фарингита (1 раз в сутки по 3 мл раствора; курс лечения — 2 недели). Для приготовления экстракта используют высушенный цветки календулы и спирт 70%-ной крепости в соотношении 1:3. После настаивания в течение 48 часов жидкость процедить и профильтровать, добавить оливковое масло (на 100 мл спиртового извлечения — 700 мл масла) и выдержать на водяной бане 7 часов (температура 80 °C). Хранить в холодильнике.

Сложный сбор. По рекомендации народного целителя М. А. Носаля, для лечения заболеваний печени, в том числе и вирусной природы, необходимо приготовить сбор (количество ингредиентов указано в частях): цветы ромашки — 1, трава спорыша — 2, кора крушины и цветки цикория — по 3, календула (цветки), цмин песчаный (цветочные корзинки) и трава зверобоя — по 4. Для лечения приготовить настой: на 2 стакана кипятка — 20 г травяного сбора. Настаивать 10 – 12 часов, после чего довести до кипения и проварить 5 минут. Принять в течение дня.

Противопоказания к применению календулы

Внутреннее применение препаратов календулы не имеет абсолютных противопоказаний, но, следует учесть, что ноготки содержат ряд биологически активных веществ, действие которых может носить ситуативный характер. Так, например, лечение с использованием календулы необходимо отложить во время вынашивания плода, так как велика вероятность выкидыша.

Препараты календулы обладают гипотензивными свойствами, поэтому этот факт необходимо учитывать гипотоникам.

Недопустимо использование календулы совместно с препаратами сходного или противоположного действия. Например, сочетание с седативными средствами может привести к непредсказуемому усилению активности, скажем, барбитуратов. С другой стороны, употребление календулы нивелирует терапевтический эффект от лечения антидепрессантами.

Календула – фармакопейное растение, поэтому любой врач даст исчерпывающую информацию в отношении допустимости целесообразности применения препаратов на основе ноготков.

Календула лекарственная.

Дата публикации: 29.06.2018 09:14

Различные народы мира давали календуле имена, исходя из своего представления об особенностях этого растения. 

В России календулу называют ноготками или ноготком, в Чехии изогнутые семена ассоциировались с полумесяцем, отсюда и название – mesicek – «маленький месяц». 

Датское название – morgenfrue – можно перевести как «утренняя госпожа», в практичном и мудром Китае календулу называют «цветок 10 тысяч лет».

Химический состав и лечебное действие экстракта календулы.

Лечебные свойства календулы лекарственной основаны на содержании в растение комплекса биологически активных веществ: каротина (провитамина А), стеринов, тритерпиноидов, флавоноидов, эфирных масел, кумаринов, макро- и микроэлементов. 

Каротиноиды – жирорастворимые растительные пигменты, относятся к тетратерпенам. Животные организмы их не образуют, но используют для синтеза витамина А. 

Наибольшую биологическую активность проявляет бетта-каротин, в результате гидролитического расщепления которого в животном организме вырабатываются молекулы витамина А.

Флавоноиды – одни из наиболее реакционноспособных фенольных соединений. В растениях они играют защитную функцию от избыточного действия ультрафиолетового облучения, а также участвуют в репродуктивных процессах. Для лошадей они полезны тем, что оказывают спазмолитическое, желчегонное, антитоксическое, диуретическое, противоязвенное, противоопухолевое действия.

Кумарины – биологически активные вещества, способствующие ликвидации воспалительных процессов в организме лошади. 

Помимо общеизвестных противовоспалительных свойств, календула (экстракт календулы) стимулирует работу сердечно-сосудистой системы, не даром её давали арабским скакунам перед скачками.

Потенциальное ветеринарное применение: укрепление сердечно-сосудистой системы, стимуляция работы желудочно-кишечного тракта, снятие спазмов различной природы, использование в различных сборах и композициях экстрактов лекарственных растений в качестве спазмолитического компонента.

Календула содержится в комплексной добавке производства компании Horse-bio "Лёгочный эликсир" BioLiq Herbal.

Растительный экстракт цветков календулы сухой

Латинское наименование: Extractum Calendulae siccum


Другое название: ноготок лекарственный.

Экстракт календулы произведен из соцветий календулы, в народе известной также под названием ноготки, которые, благодаря ярко оранжевому цвету, часто украшают приусадебные участки по всей России.

Основные свойства:
  • Регенерирующее;
  • антимикробное  и дезинфицирующее;
  • ранозаживляющее;
  • противовоспалительное;
  • увлажняющее;
  • успокаивающее;
  • матирующее.

Растворимость сухого экстракта календулы: в воде

Применение сухого экстракта календулы в производстве БАД

 Экстракт календулы сухой входит в состав БАД, регулирующих работу поджелудочной железы и печени (усиливает секреторную функцию), применяют при язве желудка и двенадцатиперстной кишки, подавляет активность вируса Herpes.

 Применение сухого экстракта календулы в лосьонах и кремах

 Экстракт календулы входит в состав кремов и гелей, обладающих увлажняющим, защитным, питательным, тонизирующим действием (для сухой и чувствительной кожи, защита от солнца). Используется каккомпонент в средствах для проблемной кожи, благодаря высокому регенеративному эффекту.  Примеры косметических продуктов с содержанием экстракта календулы: косметический лед для кожи, склонной к жирности, молочко для удаления макияжа, матирующий крем, детская косметика.

 Применение сухого экстракта календулы в других средствах по уходу

 Экстракт календулы входит в состав средств для бритья (регенеративный и увлажняющий эффект), для ухода за полостью рта (пасты, эликсиры с противовоспалительным и бактерицидным эффектом, против пародонтоза), травяных ванн.

 Химический состав календулы

Своей сильной фармакологической активностью календула обязана высоким содержанием каротиноидов и флавоноидов.

Основные биологически активные вещества сухого экстракта календулы: флавоноиды.

Количественное содержание некоторых активных веществ в календуле:

  Содержание в сырье Назначение

Каротиноиды

До 3%

(существует связь между компонентным
составом каротиноидов и местом сбора)

К каротиноидам, содержащимся в
календуле, относятся ликопин, каротин,
а также его кислородные производные
(цитроксантин, виолаксантин,флавоксантин, рубиксантин и пр.)

Флавоноиды

До 0,8%

Обладают сильным антимикробным
действием,вплоть до способности
подавляют активность вируса herpes.
На организм могут оказывать
спазмолитическое,желчегонное, антитоксическое действия.

Тритерпеноиды

2-10%

Наиболее важный компонент - моноэфир
фарадиол, в том числе благодаря
которому календула обладает противовоспалительными свойствами

Хотите экстракт календулы купить, заполните форму заказа или позвоните по указанным вверху телефонам.

Срок хранения экстракта: 3 года в сухом, защищенном от прямых солнечных лучей, месте.

 

Оценка биологически активных соединений цветков календулы лекарственной с помощью спектрофотометрии

Chem Cent J. 2012; 6: 35.

# 1 и 2

Моника Бутнариу

1 Кафедра химии и биохимии, Банатский университет сельскохозяйственных наук и ветеринарной медицины, Тимишоара, Калеа Арадулуи, no. 119, Тимишоара, 300645 Румыния

Кристина Жепа Корадини

2 Кафедра фитотехники, Банатский университет Банатский университет сельскохозяйственных наук и ветеринарной медицины, Тимишоара, Калеа Арадулуи, no.119, Тимишоара, 300645 Румыния

1 Кафедра химии и биохимии, Банатский университет сельскохозяйственных наук и ветеринарной медицины, Тимишоара, Калеа Арадулуи, no. 119, Тимишоара, 300645 Румыния

2 Кафедра фитотехники, Банатский университет Банатский университет сельскохозяйственных наук и ветеринарной медицины, Тимишоара, Калеа Арадулуи, no. 119, Тимишоара, 300645 Румыния

Автор, ответственный за переписку.

# Распространяется поровну.

Поступило 01.04.2012 г .; Принято 27 апреля 2012 г.

Эта статья цитируется в других статьях в PMC.
Дополнительные материалы

Дополнительный файл 1 Таблица 1– Относительные уровни соединений из экстрактов C. officinalis , обладающих антиоксидантным потенциалом .

GUID: D746C5B3-F4DF-48BF-8FF5-562FD1FE1F75

Дополнительный файл 2 Таблица 2 - Спектрофотометрически определенные каротиноиды цветов C. officinalis в различных растворителях .

GUID: 60E199FB-91E7-4511-A51D-E1289B3E9C18

Аннотация

Предпосылки

Это исследование было направлено на количественное определение активных биологических соединений в цветках C. officinalis . Основываясь на действующих веществах и биологических свойствах цветков бархатцев, описанных в литературе, мы стремились получить и охарактеризовать молекулярный состав экстрактов, приготовленных с использованием различных растворителей. Антиоксидантную способность экстрактов оценивали с помощью спектрофотометрии для измерения как оптической плотности колориметрического акцептора свободных радикалов 2,2-дифенил-1-пикрилгидразила (DPPH), так и общего антиоксидантного потенциала с использованием анализа восстанавливающей способности железа (FRAP).

Результаты

Спектрофотометрические анализы в ультрафиолетовой и видимой (UV-VIS) области позволили идентифицировать и охарактеризовать весь спектр фенольных и флавоноидных кислот, а высокоэффективная жидкостная хроматография (ВЭЖХ) использовалась для идентификации и количественного определения фенольных соединений ( в зависимости от метода добычи). Метанол обеспечивает более эффективное извлечение флавоноидов, чем другие испытанные растворители.

Антиоксидантная активность метанольных экстрактов коррелировала с содержанием полифенолов.

Выводы

УФ-видимые спектры пигментов-ассимиляторов (например, хлорофиллов), полифенолов и флавоноидов, экстрагированных из цветков C. officinalis , заключались в количественной оценке соединений, поглощающих волны с длиной волны более 360 нм.

Общие сведения

Благодаря особому составу и экономической ценности культивирование бархатцев ( C. officinalis ) продолжает расти [1], и Европейский Союз спонсировал несколько программ по изучению и использованию этого вида [2- 4].Лечебные свойства бархатцев объясняются разнообразием содержащихся в них биологически активных веществ [5]. Благодаря своим противовоспалительным, заживляющим и антисептическим свойствам экстракты C. officinalis применяются наружно для лечения различных кожных язв, экземы и конъюнктивита, а также внутрь для облегчения боли, возникающей при язве желудка и воспалении. Бархатцы известны своими спазмолитическими, расслабляющими, желчегонными, потогонными и ранимыми свойствами [6].Как фенольные соединения (флавоноиды и фенольные кислоты), так и сапонины содержатся в большом количестве в ноготках [7].

C. officinalis также содержит каротиноиды и тритерпеновые спирты как в свободном, так и в этерифицированном виде [8,9]. Каротиноидные пигменты, производные C. officinalis [10] и полиненасыщенные жирные кислоты, такие как календовая кислота [5], обладают воспалительными свойствами in vivo и ингибирующими свойствами in vitro [11].

Бархатцы также характеризуются присутствием некоторых важных поликарбогидратов [12], которые растворимы в воде и играют роль в спаивании тканей и контроле клеточной проницаемости [13-15].Другими веществами, идентифицированными в экстрактах C. officinalis , являются белки и аминокислоты [16], насыщенные углеводороды [17], витамин C [18] и минеральные вещества [19]. Благодаря своему сильному аромату [20] эфирные масла могут привлекать насекомых, тем самым косвенно способствуя опылению [21-23].

Некоторые летучие вещества [24] представляют собой конечные продукты анаэробного биоразложения углеводов [25] и накапливаются до уровней, сопоставимых с уровнями, синтезируемыми в клетках [26].

Помимо их роли в качестве антиоксидантов [27], полифенолы (особенно флавоноиды) обладают антимикробными свойствами [28,29].

В наших предыдущих исследованиях использовалась хроматография, чтобы продемонстрировать, что бархатцы являются хорошим источником природных антиоксидантов, в частности полифенольных веществ.

Полифенолы обычно характеризуются своим специфическим хроматографическим поведением и характерными спектрами UV-VIS.

Целью данного исследования было использование спектрофотометрии для оценки содержания фенольных и флавоноидных соединений, а также активности по улавливанию радикалов в экстрактах из различных образцов календулы.Основные фенольные соединения C. officinalis , протестированные в этом исследовании, были систематически идентифицированы путем сравнения профилей ВЭЖХ образцов с профилями подлинных фенольных стандартов и опубликованными данными (информация в патентах RO122836 - B1) [30]. Мы использовали ВЭЖХ для одновременного разделения, обнаружения и количественного определения фенольных соединений, хлорофиллов и каротиноидов за один проход. Наличие метода получения биоактивного профиля различных матриц растительности должно помочь удовлетворить растущие потребности в информации о биологических соединениях и их свойствах не только о цветках календулы, но и о других естественных источниках пищи.

Результаты

Спектрофотометрические анализы

Настоящее исследование описывает метод Folin-Ciocalteu (FC) для быстрого анализа и количественной оценки. Быстрый метод был проверен с точки зрения повторяемости, воспроизводимости, линейности, точности, затем был проведен оптимизированный аналитический метод для количественного определения фенольных соединений. Спектрофотометрические анализы для определения общего содержания флавоноидов и полифенолов в растительных экстрактах были адаптированы для использования с спектрофотометром UV-VIS (PG Instruments) и soft UV WIN 5.05 для измерения оптической плотности стандартных растворов (QE и GA) и оптической плотности образцов из растительных экстрактов [31]. Спектрофотометрические анализы для расчета концентраций кверцетина (QE) основывались на измерениях оптической плотности при 420 нм. Спектрофотометрическое определение содержания галловой кислоты (GA) рассчитывали при 765 нм. Линейность метода проверялась методом наименьших квадратов, который применялся в диапазоне концентраций 2-32 мкг / мл для QE и 1-10 мкг / мл для GA, с коэффициентом корреляции R 2 > 0.99. Для проверки результатов повторяющиеся калибровочные кривые сравнивали с эталонными веществами в течение трех дней подряд. Наблюдалась небольшая разница между калибровочными кривыми, построенными для QE, тогда как кривые для GA были почти идентичны. Все коэффициенты детерминации уравнений калибровочных прямых (R 2 ) были больше 0,99. Точность метода рассчитывалась путем сравнения определенного количества вещества с количеством вещества, рассчитанным на основе статистического анализа с помощью программы ORIGIN 7 (версии Standard / Professional).Для всех контрольных образцов различия между экспериментальными образцами и стандартами никогда не были статистически значимыми ( P <0,05). Точность (процентное отклонение определенной концентрации по отношению к рассчитанной концентрации) и прецизионность (стандартное отклонение / коэффициент вариации) методов всегда находились в пределах допустимых диапазонов (± 15% от среднего).

Чувствительность метода рассчитывалась с использованием 2 мкг / мл QE и 1 мкг / мл GA. В обоих случаях, когда точность и прецизионность, указанные в допустимых пределах в таких определениях, складывались в предел количественного определения (± 20%).

Фитохимические вещества и, в частности, соединения фенольных кислот и флавоноидов, присутствующие в цветках C. officinalis , могут частично отвечать за эти преимущества для здоровья благодаря своей антиоксидантной активности. В настоящем исследовании основные цели заключаются в выделении общего количества флавоноидов и полифенольных соединений с помощью спектрофотометрических анализов в ультрафиолетовом и видимом диапазоне. Чтобы быстро различать различные образцы, флавоноиды экстрагировали из цветов путем погружения (без разрушения ткани) в растворители (метод ВЭЖХ, мы исследуем патент RO122836-B1).

Высокоэффективная жидкостная хроматография

В соответствии с международными стандартами Ассоциации по улучшению органических культур (OCIA), Международной федерации движений за органическое сельское хозяйство (IFOAM) и Национальной программы органического сельского хозяйства США, использование экологически чистых материалов Для получения таких натуральных ингредиентов необходимы дружественные процедуры экстракции, такие как мацерация.

Мы использовали объективный анализ ВЭЖХ в сочетании со спектрофотометрическими методами для исчерпывающей характеристики полифенолов, включая соединения с антиоксидантным потенциалом, такие как флаванолы, фенольные кислоты и каротиноиды, из экстракта C.лекарственный цветков. Наиболее распространенные фенольные соединения были количественно определены с помощью ВЭЖХ по сравнению с внешними стандартами известных фенольных соединений.

Общее содержание полифенолов, флавоноидов и оценка антиоксидантной активности с использованием DPPH и FRAP

Концентрации полифенолов в экспериментальных образцах варьировались в зависимости от типа растительного материала и растворителя, используемого для экстракции. Значения, определенные с использованием метода DPPH (дополнительный файл 1 и рисунок), показали, что антиоксидантная активность была значительно выше у сорта P 2 , чем у сорта P 1 .Это можно объяснить большей ферментативной активностью в первом. Измерения проводились в диапазоне длин волн от 440 до 750 нм. Все сканы, полученные с использованием экспериментальных образцов, сравнивали со сканированными изображениями, полученными с использованием чистых растворителей. Измерения проводили через 30 минут после добавления DPPH, чтобы обеспечить достаточно времени для реакции антиоксидантов с DPPH. Как показано в Дополнительном файле 1, изменения оптической плотности на этой длине волны показывают, находятся ли радикалы DPPH в окисленном или восстановленном состоянии. Таким образом, эта длина волны обеспечивает прямой анализ и интерпретацию измеренного уменьшения поглощения.Гидрофильную антиоксидантную активность оценивали с использованием методов FRAP и DPPH. Антиоксидантная активность была выше в образцах из сорта P 2 , чем в образцах из сорта P 1 , возможно, из-за более высоких уровней биосинтеза в первом случае, чем во втором. Использование методов FRAP привело к одинаково малым значениям для всех трех типов экстрактов. Огромное распространение материалов и биологических жидкостей, содержащих биологически активную молекулу, не способствовало принятию общего метода, доступного для экстракции, который можно было бы применять в общих чертах и ​​принимать как стандартизированную технику.Широкий спектр используемых аналитов и растворителей не позволил нам использовать стандартную процедуру экстракции на протяжении всего исследования. Экстракция каротиноидов с использованием униполярных органических растворителей [32], этилового эфира или хлороформа включала мацерацию растительной ткани с последующим механическим встряхиванием и переносом экстрактов в кипящую водяную баню. Для полной экстракции требовалось значительное растирание; потому что униполярный растворитель не проникает через клеточную мембрану для растворения каротиноидов.

Содержание соединений с антиоксидантным потенциалом из экстрактов C. officinalis .

Поскольку свежий материал имеет высокие уровни, его необходимо сначала высушить перед экстракцией смешивающимися растворителями, такими как ацетон, метанол и этанол [33,34]. Тогда растительный материал может быть достаточно безводным, чтобы можно было проводить экстракцию с использованием неводных растворителей.

Целью этой экспериментальной части было количественное определение антиоксидантной активности с помощью спектрофотометрии (дополнительный файл 1).Мы разработали простой и эффективный метод извлечения. Он должен был идентифицировать флавоноиды в его экстрактах, определить количество и сделать прогноз его антиоксидантной способности спектрофотометрическим методом DPPH. Модель улавливания стабильного радикала DPPH является широко используемым методом для оценки способности различных образцов улавливать свободные радикалы.

Анализ пигментов

Органические экстракты содержали каротиноиды, а также некоторые отходы, такие как хлорофилл [35,36].Анализ результатов Дополнительного файла 2 показывает различия в содержании пигментов-ассимиляторов в проанализированных образцах. Более высокие количества хлорофилла b (рисунок и рисунок) предполагают способность тканей цветка улавливать световое излучение, чтобы повысить способность растений преобразовывать световую энергию в потенциальную химическую энергию. Образцы, которые производят большее количество углеводов, получают из тканей, которые обеспечивают вещества, необходимые для развития [37].

Спектр поглощения 80% метанольных экстрактов цветов C. officinalis .

Спектры поглощения цветков C. officinalis в метаноле 80%, этаноле 96%, изопропаноле 99% и этаноле 60% .

Как сообщалось ранее [38], квантосома (комплекс между фотосинтетическими пигментами и белково-фосфорными мембранами граны) [39] включает 230 молекул хлорофилла (Chl) (160 молекул Chl a и 70 молекул Chl b ) и приблизительно 50 молекул каротиноидов.Молекулы хлорофилла a действуют как реакционные (улавливающие) центры (P 700 в фотосистеме (PS) I и P 680 в PS II). Теоретически соотношение Chl a : Chl b может варьироваться от 1: 2 до 1: 3. Из наших данных для сорта Petran (P 1 ), единственного образца, для которого соотношение между типами хлорофилла a / b хлорофилла в соотношении 1: 2 - метанольный экстракт (образец 1). Соотношение в трех других экстрактах составляло 1: 3.Для экстрактов метанола и этанола сорта Plamen (P 2 ) мы обнаружили соотношение Chl a : Chl b , равное 1: 4. Вариации относительного содержания хлорофиллов a и b могут быть связаны с нарушениями на уровне ФС II [40]. Сканирование длин волн всех экстрактов C. officinalis показано на рисунке. Специфические модели поглощения позволили нам идентифицировать определенные группы молекул и домены. Одна из наиболее важных функций каротиноидов - фотозащита фотосинтетического аппарата путем тушения триплетного хлорофилла, синглетного кислорода и других активных форм.

Каротиноиды являются структурными компонентами светособирающего хлорофилла a / b белковых комплексов PSII (LHCII) и PS I. Они участвуют как в стабилизации тримеров LHCII, так и в сборке мономеров LHCII [41]. Чтобы быть полезным в качестве меры клеточного антиоксидантного потенциала, поглощение на выбранной длине волны должно в основном зависеть от радикала DPPH, а не от помех, вызываемых антиоксидантами, такими как каротиноиды и полиненасыщенные жирные кислоты.Учитывая, что сигналы с длинами волн ниже 530 нм сильно зависят от каротиноидов, это может привести к неверной интерпретации измеренного уменьшения поглощения при выборе длины волны, на которую влияют как радикал DPPH, так и абсорбционные свойства экстракта, как это происходит для экстрактов, содержащих каротиноиды. В значительной степени этот вид помех может быть устранен путем измерения оптической плотности эталонного образца, содержащего тот же экстракт, что и образец, содержащий DPPH.

Наши усилия по количественному определению общего содержания каротиноидов в экстрактах показывают важность растворителя, выбранного для экстракции образцов.Метанол извлекает каротиноидные пигменты более эффективно, чем любой из других протестированных растворителей.

Обсуждение

Мы использовали два спектрофотометрических метода, которые включают захват свободных радикалов в растворе с помощью DPPH и оценку общего антиоксидантного потенциала (FRAP), чтобы предоставить дополнительные источники доказательств различных антиоксидантных потенциалов экстрактов из C. лекарственный цветков. Сопоставляя состав фенольных соединений с антиоксидантным действием в тканях цветов, мы обнаружили, что экстракты из C.officinalis сорт Пламен (P 2 ) обладал более высоким антиоксидантным потенциалом, чем экстракты из сорта Petran (P 1 ). Связь между антиоксидантной активностью и содержанием флавоноидов не была линейной, что позволяет предположить, что антиоксидантная активность зависит от общего содержания полифенолов. Летучие органические биосоединения напрямую поддаются анализу с помощью газовой хроматографии, метода непревзойденной разделительной способности.

Флавоноиды считаются предпочтительными биосоединениями в качестве хемотаксономических маркеров растений, поскольку они демонстрируют большое структурное разнообразие и химически стабильны.

В разработанной в данной работе методике идентификации и количественного определения основных фенольных соединений по образцам использовались более доступные методы FC для определения полифенолов.

Метод, основанный на классических нормах и стандартных рабочих процедурах, разработанных в отделе биохимии, дал каждому критерию валидации значение, соответствующее ограничениям ранее упомянутых норм.

Выводы

Антиоксидантные компоненты в экстрактах идентифицировали с помощью комбинированных методов ВЭЖХ и спектрофотометрического анализа.С помощью спектрофотометрического анализа экстрактов в УФ-видимом диапазоне мы идентифицировали определенные фенольные кислоты и флавоноиды.

Метанол позволяет более эффективно извлекать флавоноиды, чем другие исследованные растворители. Наибольшая антиоксидантная активность, связанная с содержанием полифенолов, была получена для экстрактов, приготовленных с использованием метанола. Биохимический анализ определил содержание пигментов-ассимиляторов, а также флавоноидов, которые были выражены как эквиваленты QE. После получения спектрофотометрической дозировки флавоноидов, выраженной в QE, значения включали следующие: 96.17 / 34,8 QEmg / 100 мл.

Согласно Европейской фармакопее минимальным условием качества было 0,4% общих флавоноидов, выраженных в QE. Качество сырья для бархатцев C. officinalis ( Flores Calendulae ) было обусловлено основным содержанием флавонов и полифенолов, которые накапливались в период цветения.

Методы

Образцы растений

Растения были собраны с поля на учебной базе USAMVB Timisoara.Два типа образцов растений, сорт Petran (P 1 ) и Plamen (P 2 ), были собраны и помечены на месте с использованием стандартных методов (сорта выращивались в одинаковых условиях).

Образцы растений, которые были сохранены в качестве гербарных образцов, были идентифицированы с использованием стандартного эталона для этой цели [42], по сравнению с образцами из Департамента растительных ресурсов и идентифицированы с помощью таксономистов из Департамента фитотехники растений в USAMVB Тимишоара.

Экстракция активных биологических соединений

Для экстракции использовались четыре растворителя: метанол (80%), этанол (96%), изопропанол (100%) и этанол (60%). Общий процесс мацерации в небольшом масштабе включал помещение измельченного соответствующим образом растительного материала или умеренно крупного порошка, изготовленного из него, в закрытую емкость и добавление выбранного растворителя, чтобы дать растворителю достаточно времени для проникновения через клеточную стенку для растворения компонентов внутри клетки и для того, чтобы полученный раствор проник через клеточную стенку наружу.Поскольку система статична, за исключением случайного встряхивания, процесс экстракции происходит за счет молекулярной диффузии, которая очень медленная. Закрытый сосуд используется для предотвращения испарения растворителя во время периода экстракции и, таким образом, позволяет избежать вариаций от партии к партии.

В конце процесса мацерации, когда будет достигнуто равновесие, раствор фильтруют, пропуская через специальный пресс.

Концентрации активных компонентов в процеженных и сцеженных жидкостях, иногда называемых мисцеллой, идентичны, поэтому их можно комбинировать.Учитывая, что отжатая жидкость может быть мутной с коллоидными и мелкими частицами, часто требуется определенное время для коагуляции и осаждения твердых частиц.

Осевший материал фильтруют с помощью фильтр-пресса или любого другого подходящего устройства.

Метод экстракции мацерацией - самый простой неизбирательный метод. C. officinalis. цветы выдерживали в холодной среде в контакте с растворителем при комнатной температуре (17-22 ° C) в течение 14 часов, периодически перемешивая перед отделением экстракта.Дополнительный раунд (ы) мацерации повысил эффективность процесса. Экстрагированный продукт сначала смешивали с 1 / 2-2 / 3 от общего количества растворителя, после чего жидкость отделяли и высвобождали остаток.

Он вступает в контакт с остальной частью растворителя, в результате чего добывается одна девятая часть раствора. Две жидкости экстрагируют и фильтруют вместе еще через 24 часа.

Из-за относительно пониженной термостойкости природных ароматических соединений процесс проводили в присутствии антиоксиданта аскорбиновой кислоты (0.5% мас. / Об.) [43]. Скорость экстракции (1:10 г порошка цветков / мл растворителя).

Высокоэффективная жидкостная хроматография (ВЭЖХ)

Полифенолсодержащие экстракты цветков C. officinalis разделяли на колонке C 18 (150 мм × 4,6 мм, 3 мкм) с подвижной фазой, состоящей из трех различных растворителей, используя аппарат Agilent 1100 HPLC. Скорость потока составляла 0,7 мл / мин, а объем впрыска составлял 20 мкл. Для первой системы разделения (тройной растворитель), которая использовалась для разделения флаванолов и фенольных кислот, исходная подвижная фаза состояла из 2% уксусной кислоты в воде / метаноле.Для разделения флавонолов во второй системе (бинарный растворитель: 0,25 мМ фосфатный буфер, pH = 2,5 / ацетонитрил) полифенольные соединения разделяли с использованием третьей системы (бинарный растворитель: 0,1% муравьиная кислота в воде / метаноле). Температуру колонки устанавливали на 20 ° C.

Фенольные соединения обнаружены при 260 нм. Разделенные соединения идентифицировали путем сравнения их времени удерживания (Rt) и УФ-спектров со спектрами аутентичных стандартов. Соединения были определены количественно с использованием стандартной калибровочной кривой.

Общее содержание фенолов и флавоноидов было определено как сумма связанных идентифицированных фенольных соединений. Соединения были идентифицированы путем сравнения со стандартами каждого идентифицированного соединения с использованием Rt, профиля спектра поглощения, а также путем анализа образцов после добавления чистых стандартов [35].

Общее содержание полифенолов

Общее содержание полифенолов было рассчитано с использованием реагента FC и Na 2 CO 3 10%; Впоследствии максимальное поглощение оценивали по полученной окраске относительно калибровочной кривой.Общее содержание фенольных соединений оценивали с помощью колориметрии, основанной на химическом восстановлении смеси оксидов вольфрама и молибдена с образованием синего продукта, который сильно поглощает при 760 нм.

Образование голубых соединений, полученных из FC-реактивных фенолов, не зависело от структур фенольных соединений, что позволило количественно оценить полный набор фенольных соединений из растительных экстрактов. Примерно 10 г измельченного растительного материала экстрагировали 100 мл растворителя.Общую концентрацию фенольных соединений в экстракте рассчитывали путем сравнения с кривой, построенной аналогичным образом на основе измерения, выполненного с использованием известных концентраций GA в диапазоне 0-00 мкг GA / 100 мл. Общее содержание фенолов в образцах выражали в эквивалентах GA (мг) на грамм высушенного растительного материала.

Уровни полифенолов выражали в мг / г эквивалента GA по отношению к конечной концентрации 20 мкг / мл.

Общее содержание флавоноидов

Суммарный уровень всех флавоноидов рассчитывали реакцией с 3% -ным (мас. / Об.) Раствором AlCl 3 (безводная соль), приготовленным в этаноле.

Концентрации коррелировали со значениями абсорбции с помощью калибровочной кривой, построенной с использованием известных концентраций QE. Общее содержание флавоноидов, выраженное в мг / г (эквиваленты QE), было связано с конечной концентрацией на 20 мкг / мл.

Оценка антиоксидантной активности с использованием DPPH

Примерно 10 г измельченного растительного материала экстрагировали в 100 мл 80% -ного водного раствора этанола (или других растворителей) при комнатной температуре в течение 1 часа.

Экстракты фильтровали, и фильтры оставляли испаряться в сухой среде.

Процентную активность по улавливанию свободных радикалов определяли по формуле (1), где Ai было абсорбцией до добавления тестируемого экстракта, а Af было значением абсорбции после 5-минутного времени реакции: Ai

(1)

Эффект нейтрализации свободного радикала DPPH◦ был рассчитан при трех различных концентрациях метанольных и этанольных экстрактов: порции 0,05 мл экстрактов 10, 5 и 2,5 мг / мл смешивались с 2,95 мл раствора. DPPH◦ в кювете, используемой для спектрофотометрии.

По прошествии 5 минут реакции абсорбция при 420 нм сравнивалась с поглощением метанола. QE использовали в качестве положительного контроля. При концентрации 2,5 мМ QE был способен полностью нейтрализовать (уровень использованного радикала DPPH◦).

Анализ ферроредуцирующей антиоксидантной силы (FRAP)

Мы использовали простой спектрофотометрический метод для оценки антиоксидантной способности растительных экстрактов. Это включало восстановление трипиридилтриазина трехвалентного железа [Fe (III) -TPTZ] до окрашенного трипиридилтриазина двухвалентного железа [Fe (II) -TPTZ] при низком pH.

Цветной продукт сильно поглощает при длине волны 593 нм.

Анализ пигментов

Все образцы экстрагировали ацетоном. Пигменты экстрагировали из цветка C. officinalis № с использованием 80% ацетона. Мы использовали удельные коэффициенты поглощения хлорофиллов a и b и каротиноидов ( Car ) для оценки их уровней с помощью спектрофотометрии. Все хлорофиллы содержали две основные полосы поглощения излучения: одну на синей стороне или около УФ части электромагнитного спектра, а другую - на красной стороне или около ИК области электромагнитного спектра.Отсутствие значительного поглощения в зеленой части спектра придает хлорофиллам характерный зеленый или сине-зеленоватый цвет.

Этот метод определяет количество (мг) в 100 мл экстракта каротиноидов. Составы пигментов, рассчитанные в соответствии с уравнениями 2, 3 и 4:

Chl a (мкг / г сухого вещества) = (15 . 65A 666 -7 . 34A 653 )

(2 )

Chl b (мкг / г сухого вещества) = (27 . 05A 653 - 11 .

Реагенты и другие материалы

QE и GA были получены от Sigma-Aldrich (Сент-Луис, Миссури, США), тогда как все остальные реагенты были получены от Merck. Все химические вещества и реагенты были аналитической чистоты.

Статистический анализ

Все результаты спектрофотометрических определений флавонов и полифенолов были воспроизведены после установления доверительного интервала, рассчитанного как минимум для пяти определений.Статистические различия между средними значениями были определены с использованием двустороннего парного t-критерия Стьюдента.

Сокращения

DPPH: 2,2-дифенил-1-пикрилгидразил; FRAP: восстановительная способность железа; UV-VIS: в ультрафиолетовом диапазоне; ВЭЖХ: высокоэффективная жидкостная хроматография; QE: кверцетин; GA: галловая кислота; ФК: Фолин-Чокальтеу; [Fe (III) -TPTZ]: трипиридилтриазин трехвалентного железа; [Fe (II) -TPTZ]: трипиридилтриазин двухвалентного железа; Автомобиль: каротиноиды; Chl a / Chl b : хлорофиллы a и b .

Конкурирующие интересы

Авторы заявляют об отсутствии конкурирующих интересов.

Вклад авторов

МБ задумал исследование, участвовал в разработке и координации экспериментов и интерпретации данных, а также помог разработать рукопись. CZC произвел образцы, провел анализ данных и интерпретацию данных. Все авторы прочитали и одобрили окончательную рукопись.

Дополнительный материал

Дополнительный файл 1:

Таблица 1– Относительные уровни соединений от C.лекарственный , обладающий антиоксидантным потенциалом .

Дополнительный файл 2:

Таблица 2 - Спектрофотометрически определенные каротиноиды цветка C. officinalis в различных растворителях .

Благодарности

Этот документ был опубликован в рамках проекта « Школа постдокторантуры по сельскому хозяйству и ветеринарной медицине », POSDRU / 89 / 1.5 / S / 62371, софинансируемого Европейским социальным фондом через Отраслевую оперативную программу для человека. Развитие ресурсов 2007-2013 гг.

Ссылки

  • Basch E, Bent S, Foppa I, Haskmi S, Kroll D, Mele M, Szapary P, Ulbricht C, Vora M, Yong S. Marigold ( Calendula officinalis L.): подтверждено доказательствами систематический обзор Natural Standard Research Collaboration. J Herb Pharmacother. 2006; 6: 135–59. DOI: 10.1080 / J157v06n03_08. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Календула лекарственная -L. (HTML) Plants For A Future (PFAF) http://www.pfaf.org/user/Plant.aspx?LatinName=Calendula+officinalis Дата обращения 2011/11/04.
  • Интерактивная флора Северо-Западной Европы. Календула лекарственная. Проверено 12 августа 2011.
  • Национальные институты здравоохранения. «Календула» (HTML). Травы и пищевые добавки. Национальная медицинская библиотека США; Проверено 19 октября 2011. [Google Scholar]
  • Muley BP, Khadabadi SS, Banarase NB. Фитохимические компоненты и фармакологическая активность Календула лекарственная Linn (Asteraceae) Trop J Pharm Res. 2009. 8: 455–465. [Google Scholar]
  • Танака Т., Мацуо И., Куно И.Обзор: химия вторичных полифенолов, образующихся при переработке чая и отдельных пищевых продуктов. Int J Mol Sci. 2010; 11: 14–4. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
  • Chakraborthy GS. Фитохимический скрининг экстракта листьев Calendula Officinalis Linn методом ТСХ. Int J Res Ayurveda Pharma. 2010; 1: 131–134. [Google Scholar]
  • Neukiron H, D'Ambrosio M, Dovia J, Guerriero A. Одновременное количественное определение восьми тритерпеноидных моноэфиров в цветках 10 разновидностей Calendula officinalis L.и характеристика нового моноэфира тритерпеноида. Фитохим Анал. 2004; 15: 30–35. DOI: 10.1002 / pca.739. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Джулиано Дж., Тавацца Р., Директто Дж., Бейер П., Тейлор М.А. Метаболическая инженерия биосинтеза каротиноидов в растениях. Trends Biotechnol. 2008. 26: 139–145. DOI: 10.1016 / j.tibtech.2007.12.003. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Кишимото С., Маока Т., Сумитомо К., Омия А. Анализ каротиноидного состава лепестков календулы ( Calendula officinalis L.) Biosci Biotechnol Biochem. 2005; 69: 2122–8. DOI: 10.1271 / bbb.69.2122. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Preethi KC, Kuttan R. Ранозаживляющая активность цветочного экстракта Calendula officinalis . J Basic Clin Physiol Pharmacol. 2009; 20: 73–9. [PubMed] [Google Scholar]
  • Preethi KC, Kuttan G, Kuttan R. Антиоксидантный потенциал Календула лекарственная Цветки in vitro и in vivo . Pharmaceutical Biol. 2006. 44: 691–697. DOI: 10.1080/13880200601009149. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Guinot P, Gargadennec A, Valette G, Fruchier A, Andary C. Первичные флавоноиды в красителе календулы: экстракция, структура и участие в процессе окрашивания. Фитохим Анал. 2008; 19: 46–51. DOI: 10.1002 / pca.1014. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Braga PC, Dal Sasso M, Culici M, Spallino A, Falchi M, Bertelli A, Morelli R, Lo Scalzo R. Антиоксидантная активность экстракта Calendula officinalis : ингибирующие эффекты на хемилюминесценция вспышек нейтрофилов человека и спектроскопия электронного парамагнитного резонанса.Фармакология. 2009; 83: 348–55. DOI: 10,1159 / 000217583. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Мецзомо Н., Мартинес Дж., Феррейра С.С. Экономическая жизнеспособность SFE из персика, миндаля, мяты и календулы. J Food Eng. 2011; 103: 473–479. DOI: 10.1016 / j.jfoodeng.2010.10.032. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Хэдфилд Р.А., Влахович Т.К., Хан Т. Использование календулы для лечения кожных заболеваний в подиатрической области. Голеностопный сустав стопы J. 2008; 1: 1–8. DOI: 10.1186 / 1757-1146-1-1. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Мулей Б.П., Хадабади С.С., Банарас Н.Б.Фитохимические компоненты и фармакологическая активность Календула лекарственная Linn (Asteraceae) Tropical J Pharm Res. 2009. 8: 455–465. [Google Scholar]
  • Сильва Э. Дж. Р., Гонсалвес Э. С., Агиар Ф., Эвенсио Л. Б., Лира ММА, Коэльо MCOC, Фрага MCCA, Wanderley AG. Токсикологические исследования водно-спиртового экстракта Календулы лекарственной L. Фитотерапевтические исследования. 2007. 21: 332–336. DOI: 10.1002 / ptr.2009. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Naguib NY, Khalil MY, El Sherbeny SE.Сравнительное исследование продуктивности и химических составляющих различных источников и видов растений календулы , подвергшихся воздействию двух листовых удобрений. J Appl Sci Res. 2005; 1: 176–189. [Google Scholar]
  • Халид К.А., Тейшейра да Силва Дж.А. Урожайность, содержание эфирного масла и пигмента в цветочных головках Calendula officinalis L., культивируемых в условиях солевого стресса. Sci Hort. 2010; 126: 297–305. DOI: 10.1016 / j.scienta.2010.07.023. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Паолини Дж., Барбони Т., Дежобер Дж. М., Джабу Н., Музелли А., Коста Дж.Химический состав, внутривидовые и сезонные колебания эфирных масел Calendula arvensis L. Biochem Syst Ecol. 2010. 38: 865–874. DOI: 10.1016 / j.bse.2010.07.009. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Fronza M, Heinzmann B, Hamburger M, Laufer S, Merfort I. Определение раневого эффекта экстрактов календулы с использованием анализа царапин с фибробластами 3T3. J Ethnopharmacol. 2009; 126: 463–467. DOI: 10.1016 / j.jep.2009.09.014. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Безбрадица Д., Милич-Ашкрабич Дж., Петрович С.Д., Шилер-Маринкович С.Исследование влияния растворителя на кинетику разложения каротиноидов в масляных экстрактах C. officinalis . J Serb Chem Soc. 2005. 70: 115–124. DOI: 10.2298 / JSC0501115B. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Лу С., Ли Л. Метаболизм каротиноидов: биосинтез, регуляция и не только. J Integrative Plant Biol. 2008. 50: 778–785. DOI: 10.1111 / j.1744-7909.2008.00708.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Fonseca YM, Catini CD, Vicentini FTMC, Nomizo A, Gerlach RF, Fonseca MJV.Защитный эффект экстракта Calendula officinalis против окислительного стресса, вызванного ультрафиолетом B, в коже: оценка снижения уровня глутатиона и секреции матриксной металлопротеиназы. J Ethnopharmacol. 2010; 127: 596–601. DOI: 10.1016 / j.jep.2009.12.019. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Ириани Р., Мальдонаде Д., Родригес-Амайя Б., Адилма Р., Скампарини П. Каротиноиды дрожжей, выделенные из экосистемы Бразилии. Food Chem. 2008; 107: 145–150. DOI: 10.1016 / j.foodchem.2007.07.075.[CrossRef] [Google Scholar]
  • Раал А., Кирсипуу К. Общее содержание флавоноидов в сортах Calendula officinalis L., происходящих из разных стран и возделываемых в Эстонии. Nat Prod Res. 2011; 25: 658–62. DOI: 10.1080 / 14786419.2010.528417. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Прити К., Чандран Р.К. Влияние экстракта цветков Calendula officinalis на белки острой фазы, механизм антиоксидантной защиты и образование гранулем во время термических ожогов.J Clin Biochem Nutr. 2008; 43: 58–64. DOI: 10.3164 / jcbn.2008043. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Фариа Р.Л., Кардосо Л.М., Акисуэ Дж., Перейра, Калифорния, Джункейра Дж. С., Хорхе А.О., Сантос Жуниор П.В. Противомикробная активность Calendula officinalis, Camellia sinensis и хлоргексидина в отношении прикрепления микроорганизмов к швам после удаления непрорезавшихся третьих моляров. J Appl Oral Sci. 2011; 19: 476–82. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
  • Butnariu M, Palicica RD.Buletinul Oficial de Proprietate Industriala, Патентные заявки. Vol. 3. ОСИМ, РО122836-Б1; 2010. Аптечная мазь на основе цветков календулы, выращенных на обогащенных цинком почвах, и способ ее приготовления; С. 1–18. [Google Scholar]
  • Preethi KC, Siveen KS, Kuttan R, Kuttan G. Ингибирование метастазирования клеток меланомы B16F-10 у мышей C57BL / 6 с помощью экстракта цветков Calendula officinalis L. Азиатский Pac J Cancer Prev. 2010; 11: 1773–9. [PubMed] [Google Scholar]
  • Ло Дж., Чжан Л., Ван М., Хе С., Ян Ю.Определение кверцетина и кемпферола в растениях Dysosma методом RP-HPLC. Чжунго Чжун Яо За Чжи. 2010; 35: 3021–3023. [PubMed] [Google Scholar]
  • Даниэльски Л., Кампос LMAS, Брешиани Л.Ф.В., Хенсе Х., Юнес Р.А., Феррейра С.С. Олеорезин календулы ( Calendula officinalis L.): растворимость в SC-CO 2 и профиль состава. Chem Eng Proc. 2007. 46: 99–106. DOI: 10.1016 / j.cep.2006.05.004. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Раал А., Кирсипуу К., Муст Р., Тенно С. Содержание общих каротиноидов в Calendula officinalis L.из разных стран, выращиваемых в Эстонии. Nat Prod Commun. 2009; 4: 35–8. [PubMed] [Google Scholar]
  • Газим З., Резенде С., Фрага С., Диас Филхо Б., Накамура С., Кортез Д. Анализ эфирных масел из Календулы лекарственной , растущей в Бразилии, с использованием трех различных процедур экстракции. Brazil J Pharm Sci. 2008; 44: 391–395. [Google Scholar]
  • Сильва Э. Дж., Коста-Сильва Дж. Х., Эвенсио Л. Б., Фрага Мдо С., Коэльо М. С., Wanderley AG. Репродуктивная оценка водно-спиртового экстракта календулы лекарственной календулы лекарственной L.у крыс линии Вистар. Phytother Res. 2009; 23: 1392–8. DOI: 10.1002 / ptr.2785. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Лич MJ. C. officinalis и заживление ран: систематический обзор. Раны. 2008. 20: 236–243. [PubMed] [Google Scholar]
  • Око О.О., Садименко А.А., Афолаян А.Дж. Влияние возраста на урожайность и состав эфирных масел Calendula officinalis . J Appl Sci. 2007. 7: 3806–3810. [Google Scholar]
  • Лю Цзинь, Ян Х, Ван К., Куанг Т., Чжан Дж., Гуй Л., Ань Х, Чанг В.Кристаллическая структура основного светособирающего комплекса шпината при разрешении 2,72 Å. Природа. 2004. 428: 287–292. DOI: 10,1038 / природа02373. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Гуськов А., Керн Дж., Габдулхаков А., Брозер М., Зуни А., Сенгер В. Фотосистема II цианобактерий с разрешением 2,9 Å и роль хинонов, липидов, каналов и хлорида. Nat Struct Mol Biol. 2009. 16: 334–342. DOI: 10.1038 / nsmb.1559. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Баллоттария М., Жирардона Дж., Далл'Остоа Л., Басси Р.Эволюция и функциональные свойства светособирающих комплексов Photosystem II у эукариот. Biochim Biophys Acta Bioenerg. 2012; 1817: 143–157. DOI: 10.1016 / j.bbabio.2011.06.005. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Европейская фармакопея. PHARMEUROPA. 2011; 23 http: //www.edqm. eu / en / News-and-General-Information-43.html Дата обращения 2015/10/15. [Google Scholar]
  • Granger KL, Gallagher RS, Fuerst EP, Alldredge JR. Сравнение методов фенольной экстракции семян и методов анализа. Методы Ecol Evol.2011; 2: 691–698. DOI: 10.1111 / j.2041-210X.2011.00120.x. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Тутин Т.Г., Хейвуд В.Х., Берджес Н.А., Валентайн Д.Х., Уолтерс С.М., Уэбб Д.А., редактор. Набор в мягкой обложке. Vol. 5. 2010. Флора европейская; п. 135. [Google Scholar]
  • Ph. Eur. Справочные стандарты. http://www.edqm.eu/en/Ph-Eur-Reference-Standards-627.html Источник 2011/10/16.
  • ВОЗ. Международные химические эталонные вещества. (ICRS) 2010. http://www.edqm.eu/en/WHO-International-Chemical-Reference-Substances-ICRS-1393.html Проверено 18 октября 2011 г.
  • ISO-14502-1: 2005; и AOAC 941.15.AOAC, 2003

Оценка биологически активных соединений цветков календулы лекарственной с использованием спектрофотометрии

Chem Cent J. 2012; 6: 35.

# 1 и 2

Моника Бутнариу

1 Кафедра химии и биохимии, Банатский университет сельскохозяйственных наук и ветеринарной медицины, Тимишоара, Калеа Арадулуи, no.119, Тимишоара, 300645 Румыния

Кристина Жепа Корадини

2 Кафедра фитотехники, Банатский университет Банатский университет сельскохозяйственных наук и ветеринарной медицины, Тимишоара, Калеа Арадулуи, no. 119, Тимишоара, 300645 Румыния

1 Кафедра химии и биохимии, Банатский университет сельскохозяйственных наук и ветеринарной медицины, Тимишоара, Калеа Арадулуи, no. 119, Тимишоара, 300645 Румыния

2 Кафедра фитотехники, Банатский университет Банатский университет сельскохозяйственных наук и ветеринарной медицины, Тимишоара, Калеа Арадулуи, no.119, Тимишоара, 300645 Румыния

Автор, ответственный за переписку.

# Распространяется поровну.

Поступило 01.04.2012 г .; Принято 27 апреля 2012 г.

Эта статья цитируется в других статьях в PMC.
Дополнительные материалы

Дополнительный файл 1 Таблица 1– Относительные уровни соединений из экстрактов C. officinalis , обладающих антиоксидантным потенциалом .

GUID: D746C5B3-F4DF-48BF-8FF5-562FD1FE1F75

Дополнительный файл 2 Таблица 2 - Спектрофотометрически определенные каротиноиды C.лекарственный цветок в разных растворителях .

GUID: 60E199FB-91E7-4511-A51D-E1289B3E9C18

Аннотация

Предпосылки

Это исследование было направлено на количественное определение активных биологических соединений в цветках C. officinalis . Основываясь на действующих веществах и биологических свойствах цветков бархатцев, описанных в литературе, мы стремились получить и охарактеризовать молекулярный состав экстрактов, приготовленных с использованием различных растворителей.Антиоксидантную способность экстрактов оценивали с помощью спектрофотометрии для измерения как оптической плотности колориметрического акцептора свободных радикалов 2,2-дифенил-1-пикрилгидразила (DPPH), так и общего антиоксидантного потенциала с использованием анализа восстанавливающей способности железа (FRAP).

Результаты

Спектрофотометрические анализы в ультрафиолетовой и видимой (UV-VIS) области позволили идентифицировать и охарактеризовать весь спектр фенольных и флавоноидных кислот, а высокоэффективная жидкостная хроматография (ВЭЖХ) использовалась для идентификации и количественного определения фенольных соединений ( в зависимости от метода добычи).Метанол обеспечивает более эффективное извлечение флавоноидов, чем другие испытанные растворители.

Антиоксидантная активность метанольных экстрактов коррелировала с содержанием полифенолов.

Выводы

УФ-видимые спектры пигментов-ассимиляторов (например, хлорофиллов), полифенолов и флавоноидов, экстрагированных из цветков C. officinalis , заключались в количественной оценке соединений, поглощающих волны с длиной волны более 360 нм.

Общие сведения

Благодаря особому составу и экономической ценности выращивание бархатцев ( C.officinalis ) продолжает расти [1], а Европейский Союз спонсировал несколько программ по изучению и эксплуатации этого вида [2-4]. Лечебные свойства бархатцев объясняются разнообразием содержащихся в них биологически активных веществ [5]. Благодаря своим противовоспалительным, заживляющим и антисептическим свойствам экстракты C. officinalis применяются наружно для лечения различных кожных язв, экземы и конъюнктивита, а также внутрь для облегчения боли, возникающей при язве желудка и воспалении.Бархатцы известны своими спазмолитическими, расслабляющими, желчегонными, потогонными и ранимыми свойствами [6]. Как фенольные соединения (флавоноиды и фенольные кислоты), так и сапонины содержатся в большом количестве в ноготках [7].

C. officinalis также содержит каротиноиды и тритерпеновые спирты как в свободном, так и в этерифицированном виде [8,9]. Каротиноидные пигменты, производные C. officinalis [10] и полиненасыщенные жирные кислоты, такие как календовая кислота [5], обладают воспалительными свойствами in vivo и ингибирующими свойствами in vitro [11].

Бархатцы также характеризуются присутствием некоторых важных поликарбогидратов [12], которые растворимы в воде и играют роль в спаивании тканей и контроле клеточной проницаемости [13-15]. Другими веществами, идентифицированными в экстрактах C. officinalis , являются белки и аминокислоты [16], насыщенные углеводороды [17], витамин C [18] и минеральные вещества [19]. Благодаря своему сильному аромату [20] эфирные масла могут привлекать насекомых, тем самым косвенно способствуя опылению [21-23].

Некоторые летучие вещества [24] представляют собой конечные продукты анаэробного биоразложения углеводов [25] и накапливаются до уровней, сопоставимых с уровнями, синтезируемыми в клетках [26].

Помимо их роли в качестве антиоксидантов [27], полифенолы (особенно флавоноиды) обладают антимикробными свойствами [28,29].

В наших предыдущих исследованиях использовалась хроматография, чтобы продемонстрировать, что бархатцы являются хорошим источником природных антиоксидантов, в частности полифенольных веществ.

Полифенолы обычно характеризуются своим специфическим хроматографическим поведением и характерными спектрами UV-VIS.

Целью данного исследования было использование спектрофотометрии для оценки содержания фенольных и флавоноидных соединений, а также активности по улавливанию радикалов в экстрактах из различных образцов календулы. Основные фенольные соединения C. officinalis , протестированные в этом исследовании, были систематически идентифицированы путем сравнения профилей ВЭЖХ образцов с профилями подлинных фенольных стандартов и опубликованными данными (информация в патентах RO122836 - B1) [30]. Мы использовали ВЭЖХ для одновременного разделения, обнаружения и количественного определения фенольных соединений, хлорофиллов и каротиноидов за один проход.Наличие метода получения биоактивного профиля различных матриц растительности должно помочь удовлетворить растущие потребности в информации о биологических соединениях и их свойствах не только о цветках календулы, но и о других естественных источниках пищи.

Результаты

Спектрофотометрические анализы

Настоящее исследование описывает метод Folin-Ciocalteu (FC) для быстрого анализа и количественной оценки. Быстрый метод был проверен с точки зрения повторяемости, воспроизводимости, линейности, точности, затем был проведен оптимизированный аналитический метод для количественного определения фенольных соединений.Спектрофотометрические анализы для определения общего содержания флавоноидов и полифенолов в растительных экстрактах были адаптированы для использования со спектрофотометром UV-VIS (PG Instruments) и soft UV WIN 5.05 для измерения оптической плотности контрольных растворов (QE и GA) и оптической плотности образцов. из экстрактов растений [31]. Спектрофотометрические анализы для расчета концентраций кверцетина (QE) основывались на измерениях оптической плотности при 420 нм. Спектрофотометрическое определение содержания галловой кислоты (GA) рассчитывали при 765 нм.Линейность метода проверяли методом наименьших квадратов, который применялся в диапазоне концентраций 2-32 мкг / мл для QE и 1-10 мкг / мл для GA, с коэффициентом корреляции R 2 > 0,99. Для проверки результатов повторяющиеся калибровочные кривые сравнивали с эталонными веществами в течение трех дней подряд. Наблюдалась небольшая разница между калибровочными кривыми, построенными для QE, тогда как кривые для GA были почти идентичны. Все коэффициенты детерминации уравнений калибровочных прямых (R 2 ) были больше 0.99. Точность метода рассчитывалась путем сравнения определенного количества вещества с количеством вещества, рассчитанным на основе статистического анализа с помощью программы ORIGIN 7 (версии Standard / Professional). Для всех контрольных образцов различия между экспериментальными образцами и стандартами никогда не были статистически значимыми ( P <0,05). Точность (процентное отклонение определенной концентрации по отношению к рассчитанной концентрации) и прецизионность (стандартное отклонение / коэффициент вариации) методов всегда находились в пределах допустимых диапазонов (± 15% от среднего).

Чувствительность метода рассчитывалась с использованием 2 мкг / мл QE и 1 мкг / мл GA. В обоих случаях, когда точность и прецизионность, указанные в допустимых пределах в таких определениях, складывались в предел количественного определения (± 20%).

Фитохимические вещества и, в частности, соединения фенольных кислот и флавоноидов, присутствующие в цветках C. officinalis , могут частично отвечать за эти преимущества для здоровья благодаря своей антиоксидантной активности. В настоящем исследовании основные цели заключаются в выделении общего количества флавоноидов и полифенольных соединений с помощью спектрофотометрических анализов в ультрафиолетовом и видимом диапазоне.Чтобы быстро различать различные образцы, флавоноиды экстрагировали из цветов путем погружения (без разрушения ткани) в растворители (метод ВЭЖХ, мы исследуем патент RO122836-B1).

Высокоэффективная жидкостная хроматография

В соответствии с международными стандартами Ассоциации по улучшению органических культур (OCIA), Международной федерации движений за органическое сельское хозяйство (IFOAM) и Национальной программы органического сельского хозяйства США, использование экологически чистых материалов Для получения таких натуральных ингредиентов необходимы дружественные процедуры экстракции, такие как мацерация.

Мы использовали объективный анализ ВЭЖХ в сочетании со спектрофотометрическими методами для исчерпывающей характеристики полифенолов, включая соединения с антиоксидантным потенциалом, такие как флаванолы, фенольные кислоты и каротиноиды, из экстракта цветков C. officinalis . Наиболее распространенные фенольные соединения были количественно определены с помощью ВЭЖХ по сравнению с внешними стандартами известных фенольных соединений.

Общее содержание полифенолов, флавоноидов и оценка антиоксидантной активности с использованием DPPH и FRAP

Концентрации полифенолов в экспериментальных образцах варьировались в зависимости от типа растительного материала и растворителя, используемого для экстракции.Значения, определенные с использованием метода DPPH (дополнительный файл 1 и рисунок), показали, что антиоксидантная активность была значительно выше у сорта P 2 , чем у сорта P 1 . Это можно объяснить большей ферментативной активностью в первом. Измерения проводились в диапазоне длин волн от 440 до 750 нм. Все сканы, полученные с использованием экспериментальных образцов, сравнивали со сканированными изображениями, полученными с использованием чистых растворителей. Измерения проводили через 30 минут после добавления DPPH, чтобы обеспечить достаточно времени для реакции антиоксидантов с DPPH.Как показано в Дополнительном файле 1, изменения оптической плотности на этой длине волны показывают, находятся ли радикалы DPPH в окисленном или восстановленном состоянии. Таким образом, эта длина волны обеспечивает прямой анализ и интерпретацию измеренного уменьшения поглощения. Гидрофильную антиоксидантную активность оценивали с использованием методов FRAP и DPPH. Антиоксидантная активность была выше в образцах из сорта P 2 , чем в образцах из сорта P 1 , возможно, из-за более высоких уровней биосинтеза в первом случае, чем во втором.Использование методов FRAP привело к одинаково малым значениям для всех трех типов экстрактов. Огромное распространение материалов и биологических жидкостей, содержащих биологически активную молекулу, не способствовало принятию общего метода, доступного для экстракции, который можно было бы применять в общих чертах и ​​принимать как стандартизированную технику. Широкий спектр используемых аналитов и растворителей не позволил нам использовать стандартную процедуру экстракции на протяжении всего исследования. Экстракция каротиноидов с использованием униполярных органических растворителей [32], этилового эфира или хлороформа включала мацерацию растительной ткани с последующим механическим встряхиванием и переносом экстрактов в кипящую водяную баню.Для полной экстракции требовалось значительное растирание; потому что униполярный растворитель не проникает через клеточную мембрану для растворения каротиноидов.

Содержание соединений с антиоксидантным потенциалом из экстрактов C. officinalis .

Поскольку свежий материал имеет высокие уровни, его необходимо сначала высушить перед экстракцией смешивающимися растворителями, такими как ацетон, метанол и этанол [33,34]. Тогда растительный материал может быть достаточно безводным, чтобы можно было проводить экстракцию с использованием неводных растворителей.

Целью этой экспериментальной части было количественное определение антиоксидантной активности с помощью спектрофотометрии (дополнительный файл 1). Мы разработали простой и эффективный метод извлечения. Он должен был идентифицировать флавоноиды в его экстрактах, определить количество и сделать прогноз его антиоксидантной способности спектрофотометрическим методом DPPH. Модель улавливания стабильного радикала DPPH является широко используемым методом для оценки способности различных образцов улавливать свободные радикалы.

Анализ пигментов

Органические экстракты содержали каротиноиды, а также некоторые отходы, такие как хлорофилл [35,36]. Анализ результатов Дополнительного файла 2 показывает различия в содержании пигментов-ассимиляторов в проанализированных образцах. Более высокие количества хлорофилла b (рисунок и рисунок) предполагают способность тканей цветка улавливать световое излучение, чтобы повысить способность растений преобразовывать световую энергию в потенциальную химическую энергию.Образцы, которые производят большее количество углеводов, получают из тканей, которые обеспечивают вещества, необходимые для развития [37].

Спектр поглощения 80% метанольных экстрактов цветов C. officinalis .

Спектры поглощения цветков C. officinalis в метаноле 80%, этаноле 96%, изопропаноле 99% и этаноле 60% .

Как сообщалось ранее [38], квантосома (комплекс между фотосинтетическими пигментами и белково-фосфорными мембранами граны) [39] включает 230 молекул хлорофилла (Chl) (160 молекул Chl a и 70 молекул Chl b ) и приблизительно 50 молекул каротиноидов.Молекулы хлорофилла a действуют как реакционные (улавливающие) центры (P 700 в фотосистеме (PS) I и P 680 в PS II). Теоретически соотношение Chl a : Chl b может варьироваться от 1: 2 до 1: 3. Из наших данных для сорта Petran (P 1 ), единственного образца, для которого соотношение между типами хлорофилла a / b хлорофилла в соотношении 1: 2 - метанольный экстракт (образец 1). Соотношение в трех других экстрактах составляло 1: 3.Для экстрактов метанола и этанола сорта Plamen (P 2 ) мы обнаружили соотношение Chl a : Chl b , равное 1: 4. Вариации относительного содержания хлорофиллов a и b могут быть связаны с нарушениями на уровне ФС II [40]. Сканирование длин волн всех экстрактов C. officinalis показано на рисунке. Специфические модели поглощения позволили нам идентифицировать определенные группы молекул и домены. Одна из наиболее важных функций каротиноидов - фотозащита фотосинтетического аппарата путем тушения триплетного хлорофилла, синглетного кислорода и других активных форм.

Каротиноиды являются структурными компонентами светособирающего хлорофилла a / b белковых комплексов PSII (LHCII) и PS I. Они участвуют как в стабилизации тримеров LHCII, так и в сборке мономеров LHCII [41]. Чтобы быть полезным в качестве меры клеточного антиоксидантного потенциала, поглощение на выбранной длине волны должно в основном зависеть от радикала DPPH, а не от помех, вызываемых антиоксидантами, такими как каротиноиды и полиненасыщенные жирные кислоты.Учитывая, что сигналы с длинами волн ниже 530 нм сильно зависят от каротиноидов, это может привести к неверной интерпретации измеренного уменьшения поглощения при выборе длины волны, на которую влияют как радикал DPPH, так и абсорбционные свойства экстракта, как это происходит для экстрактов, содержащих каротиноиды. В значительной степени этот вид помех может быть устранен путем измерения оптической плотности эталонного образца, содержащего тот же экстракт, что и образец, содержащий DPPH.

Наши усилия по количественному определению общего содержания каротиноидов в экстрактах показывают важность растворителя, выбранного для экстракции образцов.Метанол извлекает каротиноидные пигменты более эффективно, чем любой из других протестированных растворителей.

Обсуждение

Мы использовали два спектрофотометрических метода, которые включают захват свободных радикалов в растворе с помощью DPPH и оценку общего антиоксидантного потенциала (FRAP), чтобы предоставить дополнительные источники доказательств различных антиоксидантных потенциалов экстрактов из C. лекарственный цветков. Сопоставляя состав фенольных соединений с антиоксидантным действием в тканях цветов, мы обнаружили, что экстракты из C.officinalis сорт Пламен (P 2 ) обладал более высоким антиоксидантным потенциалом, чем экстракты из сорта Petran (P 1 ). Связь между антиоксидантной активностью и содержанием флавоноидов не была линейной, что позволяет предположить, что антиоксидантная активность зависит от общего содержания полифенолов. Летучие органические биосоединения напрямую поддаются анализу с помощью газовой хроматографии, метода непревзойденной разделительной способности.

Флавоноиды считаются предпочтительными биосоединениями в качестве хемотаксономических маркеров растений, поскольку они демонстрируют большое структурное разнообразие и химически стабильны.

В разработанной в данной работе методике идентификации и количественного определения основных фенольных соединений по образцам использовались более доступные методы FC для определения полифенолов.

Метод, основанный на классических нормах и стандартных рабочих процедурах, разработанных в отделе биохимии, дал каждому критерию валидации значение, соответствующее ограничениям ранее упомянутых норм.

Выводы

Антиоксидантные компоненты в экстрактах идентифицировали с помощью комбинированных методов ВЭЖХ и спектрофотометрического анализа.С помощью спектрофотометрического анализа экстрактов в УФ-видимом диапазоне мы идентифицировали определенные фенольные кислоты и флавоноиды.

Метанол позволяет более эффективно извлекать флавоноиды, чем другие исследованные растворители. Наибольшая антиоксидантная активность, связанная с содержанием полифенолов, была получена для экстрактов, приготовленных с использованием метанола. Биохимический анализ определил содержание пигментов-ассимиляторов, а также флавоноидов, которые были выражены как эквиваленты QE. После получения спектрофотометрической дозировки флавоноидов, выраженной в QE, значения включали следующие: 96.17 / 34,8 QEmg / 100 мл.

Согласно Европейской фармакопее минимальным условием качества было 0,4% общих флавоноидов, выраженных в QE. Качество сырья для бархатцев C. officinalis ( Flores Calendulae ) было обусловлено основным содержанием флавонов и полифенолов, которые накапливались в период цветения.

Методы

Образцы растений

Растения были собраны с поля на учебной базе USAMVB Timisoara.Два типа образцов растений, сорт Petran (P 1 ) и Plamen (P 2 ), были собраны и помечены на месте с использованием стандартных методов (сорта выращивались в одинаковых условиях).

Образцы растений, которые были сохранены в качестве гербарных образцов, были идентифицированы с использованием стандартного эталона для этой цели [42], по сравнению с образцами из Департамента растительных ресурсов и идентифицированы с помощью таксономистов из Департамента фитотехники растений в USAMVB Тимишоара.

Экстракция активных биологических соединений

Для экстракции использовались четыре растворителя: метанол (80%), этанол (96%), изопропанол (100%) и этанол (60%). Общий процесс мацерации в небольшом масштабе включал помещение измельченного соответствующим образом растительного материала или умеренно крупного порошка, изготовленного из него, в закрытую емкость и добавление выбранного растворителя, чтобы дать растворителю достаточно времени для проникновения через клеточную стенку для растворения компонентов внутри клетки и для того, чтобы полученный раствор проник через клеточную стенку наружу.Поскольку система статична, за исключением случайного встряхивания, процесс экстракции происходит за счет молекулярной диффузии, которая очень медленная. Закрытый сосуд используется для предотвращения испарения растворителя во время периода экстракции и, таким образом, позволяет избежать вариаций от партии к партии.

В конце процесса мацерации, когда будет достигнуто равновесие, раствор фильтруют, пропуская через специальный пресс.

Концентрации активных компонентов в процеженных и сцеженных жидкостях, иногда называемых мисцеллой, идентичны, поэтому их можно комбинировать.Учитывая, что отжатая жидкость может быть мутной с коллоидными и мелкими частицами, часто требуется определенное время для коагуляции и осаждения твердых частиц.

Осевший материал фильтруют с помощью фильтр-пресса или любого другого подходящего устройства.

Метод экстракции мацерацией - самый простой неизбирательный метод. C. officinalis. цветы выдерживали в холодной среде в контакте с растворителем при комнатной температуре (17-22 ° C) в течение 14 часов, периодически перемешивая перед отделением экстракта.Дополнительный раунд (ы) мацерации повысил эффективность процесса. Экстрагированный продукт сначала смешивали с 1 / 2-2 / 3 от общего количества растворителя, после чего жидкость отделяли и высвобождали остаток.

Он вступает в контакт с остальной частью растворителя, в результате чего добывается одна девятая часть раствора. Две жидкости экстрагируют и фильтруют вместе еще через 24 часа.

Из-за относительно пониженной термостойкости природных ароматических соединений процесс проводили в присутствии антиоксиданта аскорбиновой кислоты (0.5% мас. / Об.) [43]. Скорость экстракции (1:10 г порошка цветков / мл растворителя).

Высокоэффективная жидкостная хроматография (ВЭЖХ)

Полифенолсодержащие экстракты цветков C. officinalis разделяли на колонке C 18 (150 мм × 4,6 мм, 3 мкм) с подвижной фазой, состоящей из трех различных растворителей, используя аппарат Agilent 1100 HPLC. Скорость потока составляла 0,7 мл / мин, а объем впрыска составлял 20 мкл. Для первой системы разделения (тройной растворитель), которая использовалась для разделения флаванолов и фенольных кислот, исходная подвижная фаза состояла из 2% уксусной кислоты в воде / метаноле.Для разделения флавонолов во второй системе (бинарный растворитель: 0,25 мМ фосфатный буфер, pH = 2,5 / ацетонитрил) полифенольные соединения разделяли с использованием третьей системы (бинарный растворитель: 0,1% муравьиная кислота в воде / метаноле). Температуру колонки устанавливали на 20 ° C.

Фенольные соединения обнаружены при 260 нм. Разделенные соединения идентифицировали путем сравнения их времени удерживания (Rt) и УФ-спектров со спектрами аутентичных стандартов. Соединения были определены количественно с использованием стандартной калибровочной кривой.

Общее содержание фенолов и флавоноидов было определено как сумма связанных идентифицированных фенольных соединений. Соединения были идентифицированы путем сравнения со стандартами каждого идентифицированного соединения с использованием Rt, профиля спектра поглощения, а также путем анализа образцов после добавления чистых стандартов [35].

Общее содержание полифенолов

Общее содержание полифенолов было рассчитано с использованием реагента FC и Na 2 CO 3 10%; Впоследствии максимальное поглощение оценивали по полученной окраске относительно калибровочной кривой.Общее содержание фенольных соединений оценивали с помощью колориметрии, основанной на химическом восстановлении смеси оксидов вольфрама и молибдена с образованием синего продукта, который сильно поглощает при 760 нм.

Образование голубых соединений, полученных из FC-реактивных фенолов, не зависело от структур фенольных соединений, что позволило количественно оценить полный набор фенольных соединений из растительных экстрактов. Примерно 10 г измельченного растительного материала экстрагировали 100 мл растворителя.Общую концентрацию фенольных соединений в экстракте рассчитывали путем сравнения с кривой, построенной аналогичным образом на основе измерения, выполненного с использованием известных концентраций GA в диапазоне 0-00 мкг GA / 100 мл. Общее содержание фенолов в образцах выражали в эквивалентах GA (мг) на грамм высушенного растительного материала.

Уровни полифенолов выражали в мг / г эквивалента GA по отношению к конечной концентрации 20 мкг / мл.

Общее содержание флавоноидов

Суммарный уровень всех флавоноидов рассчитывали реакцией с 3% -ным (мас. / Об.) Раствором AlCl 3 (безводная соль), приготовленным в этаноле.

Концентрации коррелировали со значениями абсорбции с помощью калибровочной кривой, построенной с использованием известных концентраций QE. Общее содержание флавоноидов, выраженное в мг / г (эквиваленты QE), было связано с конечной концентрацией на 20 мкг / мл.

Оценка антиоксидантной активности с использованием DPPH

Примерно 10 г измельченного растительного материала экстрагировали в 100 мл 80% -ного водного раствора этанола (или других растворителей) при комнатной температуре в течение 1 часа.

Экстракты фильтровали, и фильтры оставляли испаряться в сухой среде.

Процентную активность по улавливанию свободных радикалов определяли по формуле (1), где Ai было абсорбцией до добавления тестируемого экстракта, а Af было значением абсорбции после 5-минутного времени реакции: Ai

(1)

Эффект нейтрализации свободного радикала DPPH◦ был рассчитан при трех различных концентрациях метанольных и этанольных экстрактов: порции 0,05 мл экстрактов 10, 5 и 2,5 мг / мл смешивались с 2,95 мл раствора. DPPH◦ в кювете, используемой для спектрофотометрии.

По прошествии 5 минут реакции абсорбция при 420 нм сравнивалась с поглощением метанола. QE использовали в качестве положительного контроля. При концентрации 2,5 мМ QE был способен полностью нейтрализовать (уровень использованного радикала DPPH◦).

Анализ ферроредуцирующей антиоксидантной силы (FRAP)

Мы использовали простой спектрофотометрический метод для оценки антиоксидантной способности растительных экстрактов. Это включало восстановление трипиридилтриазина трехвалентного железа [Fe (III) -TPTZ] до окрашенного трипиридилтриазина двухвалентного железа [Fe (II) -TPTZ] при низком pH.

Цветной продукт сильно поглощает при длине волны 593 нм.

Анализ пигментов

Все образцы экстрагировали ацетоном. Пигменты экстрагировали из цветка C. officinalis с использованием 80% ацетона. Мы использовали удельные коэффициенты поглощения хлорофиллов a и b и каротиноидов ( Car ) для оценки их уровней с помощью спектрофотометрии. Все хлорофиллы содержали две основные полосы поглощения излучения: одну на синей стороне или около УФ части электромагнитного спектра, а другую - на красной стороне или около ИК области электромагнитного спектра.Отсутствие значительного поглощения в зеленой части спектра придает хлорофиллам характерный зеленый или сине-зеленоватый цвет.

Этот метод определяет количество (мг) в 100 мл экстракта каротиноидов. Составы пигментов, рассчитанные в соответствии с уравнениями 2, 3 и 4:

Chl a (мкг / г сухого вещества) = (15 . 65A 666 -7 . 34A 653 )

(2 )

Chl b (мкг / г сухого вещества) = (27 . 05A 653 - 11 .

Реагенты и другие материалы

QE и GA были получены от Sigma-Aldrich (Сент-Луис, Миссури, США), тогда как все остальные реагенты были получены от Merck. Все химические вещества и реагенты были аналитической чистоты.

Статистический анализ

Все результаты спектрофотометрических определений флавонов и полифенолов были воспроизведены после установления доверительного интервала, рассчитанного как минимум для пяти определений.Статистические различия между средними значениями были определены с использованием двустороннего парного t-критерия Стьюдента.

Сокращения

DPPH: 2,2-дифенил-1-пикрилгидразил; FRAP: восстановительная способность железа; UV-VIS: в ультрафиолетовом диапазоне; ВЭЖХ: высокоэффективная жидкостная хроматография; QE: кверцетин; GA: галловая кислота; ФК: Фолин-Чокальтеу; [Fe (III) -TPTZ]: трипиридилтриазин трехвалентного железа; [Fe (II) -TPTZ]: трипиридилтриазин двухвалентного железа; Автомобиль: каротиноиды; Chl a / Chl b : хлорофиллы a и b .

Конкурирующие интересы

Авторы заявляют об отсутствии конкурирующих интересов.

Вклад авторов

МБ задумал исследование, участвовал в разработке и координации экспериментов и интерпретации данных, а также помог разработать рукопись. CZC произвел образцы, провел анализ данных и интерпретацию данных. Все авторы прочитали и одобрили окончательную рукопись.

Дополнительный материал

Дополнительный файл 1:

Таблица 1– Относительные уровни соединений от C.лекарственный , обладающий антиоксидантным потенциалом .

Дополнительный файл 2:

Таблица 2 - Спектрофотометрически определенные каротиноиды цветка C. officinalis в различных растворителях .

Благодарности

Этот документ был опубликован в рамках проекта « Школа постдокторантуры по сельскому хозяйству и ветеринарной медицине », POSDRU / 89 / 1.5 / S / 62371, софинансируемого Европейским социальным фондом через Отраслевую оперативную программу для человека. Развитие ресурсов 2007-2013 гг.

Ссылки

  • Basch E, Bent S, Foppa I, Haskmi S, Kroll D, Mele M, Szapary P, Ulbricht C, Vora M, Yong S. Marigold ( Calendula officinalis L.): подтверждено доказательствами систематический обзор Natural Standard Research Collaboration. J Herb Pharmacother. 2006; 6: 135–59. DOI: 10.1080 / J157v06n03_08. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Календула лекарственная -L. (HTML) Plants For A Future (PFAF) http://www.pfaf.org/user/Plant.aspx?LatinName=Calendula+officinalis Дата обращения 2011/11/04.
  • Интерактивная флора Северо-Западной Европы. Календула лекарственная. Проверено 12 августа 2011.
  • Национальные институты здравоохранения. «Календула» (HTML). Травы и пищевые добавки. Национальная медицинская библиотека США; Проверено 19 октября 2011. [Google Scholar]
  • Muley BP, Khadabadi SS, Banarase NB. Фитохимические компоненты и фармакологическая активность Календула лекарственная Linn (Asteraceae) Trop J Pharm Res. 2009. 8: 455–465. [Google Scholar]
  • Танака Т., Мацуо И., Куно И.Обзор: химия вторичных полифенолов, образующихся при переработке чая и отдельных пищевых продуктов. Int J Mol Sci. 2010; 11: 14–4. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
  • Chakraborthy GS. Фитохимический скрининг экстракта листьев Calendula Officinalis Linn методом ТСХ. Int J Res Ayurveda Pharma. 2010; 1: 131–134. [Google Scholar]
  • Neukiron H, D'Ambrosio M, Dovia J, Guerriero A. Одновременное количественное определение восьми тритерпеноидных моноэфиров в цветках 10 разновидностей Calendula officinalis L.и характеристика нового моноэфира тритерпеноида. Фитохим Анал. 2004; 15: 30–35. DOI: 10.1002 / pca.739. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Джулиано Дж., Тавацца Р., Директто Дж., Бейер П., Тейлор М.А. Метаболическая инженерия биосинтеза каротиноидов в растениях. Trends Biotechnol. 2008. 26: 139–145. DOI: 10.1016 / j.tibtech.2007.12.003. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Кишимото С., Маока Т., Сумитомо К., Омия А. Анализ каротиноидного состава лепестков календулы ( Calendula officinalis L.) Biosci Biotechnol Biochem. 2005; 69: 2122–8. DOI: 10.1271 / bbb.69.2122. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Preethi KC, Kuttan R. Ранозаживляющая активность цветочного экстракта Calendula officinalis . J Basic Clin Physiol Pharmacol. 2009; 20: 73–9. [PubMed] [Google Scholar]
  • Preethi KC, Kuttan G, Kuttan R. Антиоксидантный потенциал Календула лекарственная Цветки in vitro и in vivo . Pharmaceutical Biol. 2006. 44: 691–697. DOI: 10.1080/13880200601009149. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Guinot P, Gargadennec A, Valette G, Fruchier A, Andary C. Первичные флавоноиды в красителе календулы: экстракция, структура и участие в процессе окрашивания. Фитохим Анал. 2008; 19: 46–51. DOI: 10.1002 / pca.1014. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Braga PC, Dal Sasso M, Culici M, Spallino A, Falchi M, Bertelli A, Morelli R, Lo Scalzo R. Антиоксидантная активность экстракта Calendula officinalis : ингибирующие эффекты на хемилюминесценция вспышек нейтрофилов человека и спектроскопия электронного парамагнитного резонанса.Фармакология. 2009; 83: 348–55. DOI: 10,1159 / 000217583. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Мецзомо Н., Мартинес Дж., Феррейра С.С. Экономическая жизнеспособность SFE из персика, миндаля, мяты и календулы. J Food Eng. 2011; 103: 473–479. DOI: 10.1016 / j.jfoodeng.2010.10.032. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Хэдфилд Р.А., Влахович Т.К., Хан Т. Использование календулы для лечения кожных заболеваний в подиатрической области. Голеностопный сустав стопы J. 2008; 1: 1–8. DOI: 10.1186 / 1757-1146-1-1. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Мулей Б.П., Хадабади С.С., Банарас Н.Б.Фитохимические компоненты и фармакологическая активность Календула лекарственная Linn (Asteraceae) Tropical J Pharm Res. 2009. 8: 455–465. [Google Scholar]
  • Сильва Э. Дж. Р., Гонсалвес Э. С., Агиар Ф., Эвенсио Л. Б., Лира ММА, Коэльо MCOC, Фрага MCCA, Wanderley AG. Токсикологические исследования водно-спиртового экстракта Календулы лекарственной L. Фитотерапевтические исследования. 2007. 21: 332–336. DOI: 10.1002 / ptr.2009. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Naguib NY, Khalil MY, El Sherbeny SE.Сравнительное исследование продуктивности и химических составляющих различных источников и видов растений календулы , подвергшихся воздействию двух листовых удобрений. J Appl Sci Res. 2005; 1: 176–189. [Google Scholar]
  • Халид К.А., Тейшейра да Силва Дж.А. Урожайность, содержание эфирного масла и пигмента в цветочных головках Calendula officinalis L., культивируемых в условиях солевого стресса. Sci Hort. 2010; 126: 297–305. DOI: 10.1016 / j.scienta.2010.07.023. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Паолини Дж., Барбони Т., Дежобер Дж. М., Джабу Н., Музелли А., Коста Дж.Химический состав, внутривидовые и сезонные колебания эфирных масел Calendula arvensis L. Biochem Syst Ecol. 2010. 38: 865–874. DOI: 10.1016 / j.bse.2010.07.009. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Fronza M, Heinzmann B, Hamburger M, Laufer S, Merfort I. Определение раневого эффекта экстрактов календулы с использованием анализа царапин с фибробластами 3T3. J Ethnopharmacol. 2009; 126: 463–467. DOI: 10.1016 / j.jep.2009.09.014. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Безбрадица Д., Милич-Ашкрабич Дж., Петрович С.Д., Шилер-Маринкович С.Исследование влияния растворителя на кинетику разложения каротиноидов в масляных экстрактах C. officinalis . J Serb Chem Soc. 2005. 70: 115–124. DOI: 10.2298 / JSC0501115B. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Лу С., Ли Л. Метаболизм каротиноидов: биосинтез, регуляция и не только. J Integrative Plant Biol. 2008. 50: 778–785. DOI: 10.1111 / j.1744-7909.2008.00708.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Fonseca YM, Catini CD, Vicentini FTMC, Nomizo A, Gerlach RF, Fonseca MJV.Защитный эффект экстракта Calendula officinalis против окислительного стресса, вызванного ультрафиолетом B, в коже: оценка снижения уровня глутатиона и секреции матриксной металлопротеиназы. J Ethnopharmacol. 2010; 127: 596–601. DOI: 10.1016 / j.jep.2009.12.019. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Ириани Р., Мальдонаде Д., Родригес-Амайя Б., Адилма Р., Скампарини П. Каротиноиды дрожжей, выделенные из экосистемы Бразилии. Food Chem. 2008; 107: 145–150. DOI: 10.1016 / j.foodchem.2007.07.075.[CrossRef] [Google Scholar]
  • Раал А., Кирсипуу К. Общее содержание флавоноидов в сортах Calendula officinalis L., происходящих из разных стран и возделываемых в Эстонии. Nat Prod Res. 2011; 25: 658–62. DOI: 10.1080 / 14786419.2010.528417. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Прити К., Чандран Р.К. Влияние экстракта цветков Calendula officinalis на белки острой фазы, механизм антиоксидантной защиты и образование гранулем во время термических ожогов.J Clin Biochem Nutr. 2008; 43: 58–64. DOI: 10.3164 / jcbn.2008043. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Фариа Р.Л., Кардосо Л.М., Акисуэ Дж., Перейра, Калифорния, Джункейра Дж. С., Хорхе А.О., Сантос Жуниор П.В. Противомикробная активность Calendula officinalis, Camellia sinensis и хлоргексидина в отношении прикрепления микроорганизмов к швам после удаления непрорезавшихся третьих моляров. J Appl Oral Sci. 2011; 19: 476–82. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
  • Butnariu M, Palicica RD.Buletinul Oficial de Proprietate Industriala, Патентные заявки. Vol. 3. ОСИМ, РО122836-Б1; 2010. Аптечная мазь на основе цветков календулы, выращенных на обогащенных цинком почвах, и способ ее приготовления; С. 1–18. [Google Scholar]
  • Preethi KC, Siveen KS, Kuttan R, Kuttan G. Ингибирование метастазирования клеток меланомы B16F-10 у мышей C57BL / 6 с помощью экстракта цветков Calendula officinalis L. Азиатский Pac J Cancer Prev. 2010; 11: 1773–9. [PubMed] [Google Scholar]
  • Ло Дж., Чжан Л., Ван М., Хе С., Ян Ю.Определение кверцетина и кемпферола в растениях Dysosma методом RP-HPLC. Чжунго Чжун Яо За Чжи. 2010; 35: 3021–3023. [PubMed] [Google Scholar]
  • Даниэльски Л., Кампос LMAS, Брешиани Л.Ф.В., Хенсе Х., Юнес Р.А., Феррейра С.С. Олеорезин календулы ( Calendula officinalis L.): растворимость в SC-CO 2 и профиль состава. Chem Eng Proc. 2007. 46: 99–106. DOI: 10.1016 / j.cep.2006.05.004. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Раал А., Кирсипуу К., Муст Р., Тенно С. Содержание общих каротиноидов в Calendula officinalis L.из разных стран, выращиваемых в Эстонии. Nat Prod Commun. 2009; 4: 35–8. [PubMed] [Google Scholar]
  • Газим З., Резенде С., Фрага С., Диас Филхо Б., Накамура С., Кортез Д. Анализ эфирных масел из Календулы лекарственной , растущей в Бразилии, с использованием трех различных процедур экстракции. Brazil J Pharm Sci. 2008; 44: 391–395. [Google Scholar]
  • Сильва Э. Дж., Коста-Сильва Дж. Х., Эвенсио Л. Б., Фрага Мдо С., Коэльо М. С., Wanderley AG. Репродуктивная оценка водно-спиртового экстракта календулы лекарственной календулы лекарственной L.у крыс линии Вистар. Phytother Res. 2009; 23: 1392–8. DOI: 10.1002 / ptr.2785. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Лич MJ. C. officinalis и заживление ран: систематический обзор. Раны. 2008. 20: 236–243. [PubMed] [Google Scholar]
  • Око О.О., Садименко А.А., Афолаян А.Дж. Влияние возраста на урожайность и состав эфирных масел Calendula officinalis . J Appl Sci. 2007. 7: 3806–3810. [Google Scholar]
  • Лю Цзинь, Ян Х, Ван К., Куанг Т., Чжан Дж., Гуй Л., Ань Х, Чанг В.Кристаллическая структура основного светособирающего комплекса шпината при разрешении 2,72 Å. Природа. 2004. 428: 287–292. DOI: 10,1038 / природа02373. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Гуськов А., Керн Дж., Габдулхаков А., Брозер М., Зуни А., Сенгер В. Фотосистема II цианобактерий с разрешением 2,9 Å и роль хинонов, липидов, каналов и хлорида. Nat Struct Mol Biol. 2009. 16: 334–342. DOI: 10.1038 / nsmb.1559. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Баллоттария М., Жирардона Дж., Далл'Остоа Л., Басси Р.Эволюция и функциональные свойства светособирающих комплексов Photosystem II у эукариот. Biochim Biophys Acta Bioenerg. 2012; 1817: 143–157. DOI: 10.1016 / j.bbabio.2011.06.005. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Европейская фармакопея. PHARMEUROPA. 2011; 23 http: //www.edqm. eu / en / News-and-General-Information-43.html Дата обращения 2015/10/15. [Google Scholar]
  • Granger KL, Gallagher RS, Fuerst EP, Alldredge JR. Сравнение методов фенольной экстракции семян и методов анализа. Методы Ecol Evol.2011; 2: 691–698. DOI: 10.1111 / j.2041-210X.2011.00120.x. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Тутин Т.Г., Хейвуд В.Х., Берджес Н.А., Валентайн Д.Х., Уолтерс С.М., Уэбб Д.А., редактор. Набор в мягкой обложке. Vol. 5. 2010. Флора европейская; п. 135. [Google Scholar]
  • Ph. Eur. Справочные стандарты. http://www.edqm.eu/en/Ph-Eur-Reference-Standards-627.html Источник 2011/10/16.
  • ВОЗ. Международные химические эталонные вещества. (ICRS) 2010. http://www.edqm.eu/en/WHO-International-Chemical-Reference-Substances-ICRS-1393.html Проверено 18 октября 2011 г.
  • ISO-14502-1: 2005; и AOAC 941.15.AOAC, 2003

Оценка биологически активных соединений цветков календулы лекарственной с использованием спектрофотометрии

Chem Cent J. 2012; 6: 35.

# 1 и 2

Моника Бутнариу

1 Кафедра химии и биохимии, Банатский университет сельскохозяйственных наук и ветеринарной медицины, Тимишоара, Калеа Арадулуи, no.119, Тимишоара, 300645 Румыния

Кристина Жепа Корадини

2 Кафедра фитотехники, Банатский университет Банатский университет сельскохозяйственных наук и ветеринарной медицины, Тимишоара, Калеа Арадулуи, no. 119, Тимишоара, 300645 Румыния

1 Кафедра химии и биохимии, Банатский университет сельскохозяйственных наук и ветеринарной медицины, Тимишоара, Калеа Арадулуи, no. 119, Тимишоара, 300645 Румыния

2 Кафедра фитотехники, Банатский университет Банатский университет сельскохозяйственных наук и ветеринарной медицины, Тимишоара, Калеа Арадулуи, no.119, Тимишоара, 300645 Румыния

Автор, ответственный за переписку.

# Распространяется поровну.

Поступило 01.04.2012 г .; Принято 27 апреля 2012 г.

Эта статья цитируется в других статьях в PMC.
Дополнительные материалы

Дополнительный файл 1 Таблица 1– Относительные уровни соединений из экстрактов C. officinalis , обладающих антиоксидантным потенциалом .

GUID: D746C5B3-F4DF-48BF-8FF5-562FD1FE1F75

Дополнительный файл 2 Таблица 2 - Спектрофотометрически определенные каротиноиды C.лекарственный цветок в разных растворителях .

GUID: 60E199FB-91E7-4511-A51D-E1289B3E9C18

Аннотация

Предпосылки

Это исследование было направлено на количественное определение активных биологических соединений в цветках C. officinalis . Основываясь на действующих веществах и биологических свойствах цветков бархатцев, описанных в литературе, мы стремились получить и охарактеризовать молекулярный состав экстрактов, приготовленных с использованием различных растворителей.Антиоксидантную способность экстрактов оценивали с помощью спектрофотометрии для измерения как оптической плотности колориметрического акцептора свободных радикалов 2,2-дифенил-1-пикрилгидразила (DPPH), так и общего антиоксидантного потенциала с использованием анализа восстанавливающей способности железа (FRAP).

Результаты

Спектрофотометрические анализы в ультрафиолетовой и видимой (UV-VIS) области позволили идентифицировать и охарактеризовать весь спектр фенольных и флавоноидных кислот, а высокоэффективная жидкостная хроматография (ВЭЖХ) использовалась для идентификации и количественного определения фенольных соединений ( в зависимости от метода добычи).Метанол обеспечивает более эффективное извлечение флавоноидов, чем другие испытанные растворители.

Антиоксидантная активность метанольных экстрактов коррелировала с содержанием полифенолов.

Выводы

УФ-видимые спектры пигментов-ассимиляторов (например, хлорофиллов), полифенолов и флавоноидов, экстрагированных из цветков C. officinalis , заключались в количественной оценке соединений, поглощающих волны с длиной волны более 360 нм.

Общие сведения

Благодаря особому составу и экономической ценности выращивание бархатцев ( C.officinalis ) продолжает расти [1], а Европейский Союз спонсировал несколько программ по изучению и эксплуатации этого вида [2-4]. Лечебные свойства бархатцев объясняются разнообразием содержащихся в них биологически активных веществ [5]. Благодаря своим противовоспалительным, заживляющим и антисептическим свойствам экстракты C. officinalis применяются наружно для лечения различных кожных язв, экземы и конъюнктивита, а также внутрь для облегчения боли, возникающей при язве желудка и воспалении.Бархатцы известны своими спазмолитическими, расслабляющими, желчегонными, потогонными и ранимыми свойствами [6]. Как фенольные соединения (флавоноиды и фенольные кислоты), так и сапонины содержатся в большом количестве в ноготках [7].

C. officinalis также содержит каротиноиды и тритерпеновые спирты как в свободном, так и в этерифицированном виде [8,9]. Каротиноидные пигменты, производные C. officinalis [10] и полиненасыщенные жирные кислоты, такие как календовая кислота [5], обладают воспалительными свойствами in vivo и ингибирующими свойствами in vitro [11].

Бархатцы также характеризуются присутствием некоторых важных поликарбогидратов [12], которые растворимы в воде и играют роль в спаивании тканей и контроле клеточной проницаемости [13-15]. Другими веществами, идентифицированными в экстрактах C. officinalis , являются белки и аминокислоты [16], насыщенные углеводороды [17], витамин C [18] и минеральные вещества [19]. Благодаря своему сильному аромату [20] эфирные масла могут привлекать насекомых, тем самым косвенно способствуя опылению [21-23].

Некоторые летучие вещества [24] представляют собой конечные продукты анаэробного биоразложения углеводов [25] и накапливаются до уровней, сопоставимых с уровнями, синтезируемыми в клетках [26].

Помимо их роли в качестве антиоксидантов [27], полифенолы (особенно флавоноиды) обладают антимикробными свойствами [28,29].

В наших предыдущих исследованиях использовалась хроматография, чтобы продемонстрировать, что бархатцы являются хорошим источником природных антиоксидантов, в частности полифенольных веществ.

Полифенолы обычно характеризуются своим специфическим хроматографическим поведением и характерными спектрами UV-VIS.

Целью данного исследования было использование спектрофотометрии для оценки содержания фенольных и флавоноидных соединений, а также активности по улавливанию радикалов в экстрактах из различных образцов календулы. Основные фенольные соединения C. officinalis , протестированные в этом исследовании, были систематически идентифицированы путем сравнения профилей ВЭЖХ образцов с профилями подлинных фенольных стандартов и опубликованными данными (информация в патентах RO122836 - B1) [30]. Мы использовали ВЭЖХ для одновременного разделения, обнаружения и количественного определения фенольных соединений, хлорофиллов и каротиноидов за один проход.Наличие метода получения биоактивного профиля различных матриц растительности должно помочь удовлетворить растущие потребности в информации о биологических соединениях и их свойствах не только о цветках календулы, но и о других естественных источниках пищи.

Результаты

Спектрофотометрические анализы

Настоящее исследование описывает метод Folin-Ciocalteu (FC) для быстрого анализа и количественной оценки. Быстрый метод был проверен с точки зрения повторяемости, воспроизводимости, линейности, точности, затем был проведен оптимизированный аналитический метод для количественного определения фенольных соединений.Спектрофотометрические анализы для определения общего содержания флавоноидов и полифенолов в растительных экстрактах были адаптированы для использования со спектрофотометром UV-VIS (PG Instruments) и soft UV WIN 5.05 для измерения оптической плотности контрольных растворов (QE и GA) и оптической плотности образцов. из экстрактов растений [31]. Спектрофотометрические анализы для расчета концентраций кверцетина (QE) основывались на измерениях оптической плотности при 420 нм. Спектрофотометрическое определение содержания галловой кислоты (GA) рассчитывали при 765 нм.Линейность метода проверяли методом наименьших квадратов, который применялся в диапазоне концентраций 2-32 мкг / мл для QE и 1-10 мкг / мл для GA, с коэффициентом корреляции R 2 > 0,99. Для проверки результатов повторяющиеся калибровочные кривые сравнивали с эталонными веществами в течение трех дней подряд. Наблюдалась небольшая разница между калибровочными кривыми, построенными для QE, тогда как кривые для GA были почти идентичны. Все коэффициенты детерминации уравнений калибровочных прямых (R 2 ) были больше 0.99. Точность метода рассчитывалась путем сравнения определенного количества вещества с количеством вещества, рассчитанным на основе статистического анализа с помощью программы ORIGIN 7 (версии Standard / Professional). Для всех контрольных образцов различия между экспериментальными образцами и стандартами никогда не были статистически значимыми ( P <0,05). Точность (процентное отклонение определенной концентрации по отношению к рассчитанной концентрации) и прецизионность (стандартное отклонение / коэффициент вариации) методов всегда находились в пределах допустимых диапазонов (± 15% от среднего).

Чувствительность метода рассчитывалась с использованием 2 мкг / мл QE и 1 мкг / мл GA. В обоих случаях, когда точность и прецизионность, указанные в допустимых пределах в таких определениях, складывались в предел количественного определения (± 20%).

Фитохимические вещества и, в частности, соединения фенольных кислот и флавоноидов, присутствующие в цветках C. officinalis , могут частично отвечать за эти преимущества для здоровья благодаря своей антиоксидантной активности. В настоящем исследовании основные цели заключаются в выделении общего количества флавоноидов и полифенольных соединений с помощью спектрофотометрических анализов в ультрафиолетовом и видимом диапазоне.Чтобы быстро различать различные образцы, флавоноиды экстрагировали из цветов путем погружения (без разрушения ткани) в растворители (метод ВЭЖХ, мы исследуем патент RO122836-B1).

Высокоэффективная жидкостная хроматография

В соответствии с международными стандартами Ассоциации по улучшению органических культур (OCIA), Международной федерации движений за органическое сельское хозяйство (IFOAM) и Национальной программы органического сельского хозяйства США, использование экологически чистых материалов Для получения таких натуральных ингредиентов необходимы дружественные процедуры экстракции, такие как мацерация.

Мы использовали объективный анализ ВЭЖХ в сочетании со спектрофотометрическими методами для исчерпывающей характеристики полифенолов, включая соединения с антиоксидантным потенциалом, такие как флаванолы, фенольные кислоты и каротиноиды, из экстракта цветков C. officinalis . Наиболее распространенные фенольные соединения были количественно определены с помощью ВЭЖХ по сравнению с внешними стандартами известных фенольных соединений.

Общее содержание полифенолов, флавоноидов и оценка антиоксидантной активности с использованием DPPH и FRAP

Концентрации полифенолов в экспериментальных образцах варьировались в зависимости от типа растительного материала и растворителя, используемого для экстракции.Значения, определенные с использованием метода DPPH (дополнительный файл 1 и рисунок), показали, что антиоксидантная активность была значительно выше у сорта P 2 , чем у сорта P 1 . Это можно объяснить большей ферментативной активностью в первом. Измерения проводились в диапазоне длин волн от 440 до 750 нм. Все сканы, полученные с использованием экспериментальных образцов, сравнивали со сканированными изображениями, полученными с использованием чистых растворителей. Измерения проводили через 30 минут после добавления DPPH, чтобы обеспечить достаточно времени для реакции антиоксидантов с DPPH.Как показано в Дополнительном файле 1, изменения оптической плотности на этой длине волны показывают, находятся ли радикалы DPPH в окисленном или восстановленном состоянии. Таким образом, эта длина волны обеспечивает прямой анализ и интерпретацию измеренного уменьшения поглощения. Гидрофильную антиоксидантную активность оценивали с использованием методов FRAP и DPPH. Антиоксидантная активность была выше в образцах из сорта P 2 , чем в образцах из сорта P 1 , возможно, из-за более высоких уровней биосинтеза в первом случае, чем во втором.Использование методов FRAP привело к одинаково малым значениям для всех трех типов экстрактов. Огромное распространение материалов и биологических жидкостей, содержащих биологически активную молекулу, не способствовало принятию общего метода, доступного для экстракции, который можно было бы применять в общих чертах и ​​принимать как стандартизированную технику. Широкий спектр используемых аналитов и растворителей не позволил нам использовать стандартную процедуру экстракции на протяжении всего исследования. Экстракция каротиноидов с использованием униполярных органических растворителей [32], этилового эфира или хлороформа включала мацерацию растительной ткани с последующим механическим встряхиванием и переносом экстрактов в кипящую водяную баню.Для полной экстракции требовалось значительное растирание; потому что униполярный растворитель не проникает через клеточную мембрану для растворения каротиноидов.

Содержание соединений с антиоксидантным потенциалом из экстрактов C. officinalis .

Поскольку свежий материал имеет высокие уровни, его необходимо сначала высушить перед экстракцией смешивающимися растворителями, такими как ацетон, метанол и этанол [33,34]. Тогда растительный материал может быть достаточно безводным, чтобы можно было проводить экстракцию с использованием неводных растворителей.

Целью этой экспериментальной части было количественное определение антиоксидантной активности с помощью спектрофотометрии (дополнительный файл 1). Мы разработали простой и эффективный метод извлечения. Он должен был идентифицировать флавоноиды в его экстрактах, определить количество и сделать прогноз его антиоксидантной способности спектрофотометрическим методом DPPH. Модель улавливания стабильного радикала DPPH является широко используемым методом для оценки способности различных образцов улавливать свободные радикалы.

Анализ пигментов

Органические экстракты содержали каротиноиды, а также некоторые отходы, такие как хлорофилл [35,36]. Анализ результатов Дополнительного файла 2 показывает различия в содержании пигментов-ассимиляторов в проанализированных образцах. Более высокие количества хлорофилла b (рисунок и рисунок) предполагают способность тканей цветка улавливать световое излучение, чтобы повысить способность растений преобразовывать световую энергию в потенциальную химическую энергию.Образцы, которые производят большее количество углеводов, получают из тканей, которые обеспечивают вещества, необходимые для развития [37].

Спектр поглощения 80% метанольных экстрактов цветов C. officinalis .

Спектры поглощения цветков C. officinalis в метаноле 80%, этаноле 96%, изопропаноле 99% и этаноле 60% .

Как сообщалось ранее [38], квантосома (комплекс между фотосинтетическими пигментами и белково-фосфорными мембранами граны) [39] включает 230 молекул хлорофилла (Chl) (160 молекул Chl a и 70 молекул Chl b ) и приблизительно 50 молекул каротиноидов.Молекулы хлорофилла a действуют как реакционные (улавливающие) центры (P 700 в фотосистеме (PS) I и P 680 в PS II). Теоретически соотношение Chl a : Chl b может варьироваться от 1: 2 до 1: 3. Из наших данных для сорта Petran (P 1 ), единственного образца, для которого соотношение между типами хлорофилла a / b хлорофилла в соотношении 1: 2 - метанольный экстракт (образец 1). Соотношение в трех других экстрактах составляло 1: 3.Для экстрактов метанола и этанола сорта Plamen (P 2 ) мы обнаружили соотношение Chl a : Chl b , равное 1: 4. Вариации относительного содержания хлорофиллов a и b могут быть связаны с нарушениями на уровне ФС II [40]. Сканирование длин волн всех экстрактов C. officinalis показано на рисунке. Специфические модели поглощения позволили нам идентифицировать определенные группы молекул и домены. Одна из наиболее важных функций каротиноидов - фотозащита фотосинтетического аппарата путем тушения триплетного хлорофилла, синглетного кислорода и других активных форм.

Каротиноиды являются структурными компонентами светособирающего хлорофилла a / b белковых комплексов PSII (LHCII) и PS I. Они участвуют как в стабилизации тримеров LHCII, так и в сборке мономеров LHCII [41]. Чтобы быть полезным в качестве меры клеточного антиоксидантного потенциала, поглощение на выбранной длине волны должно в основном зависеть от радикала DPPH, а не от помех, вызываемых антиоксидантами, такими как каротиноиды и полиненасыщенные жирные кислоты.Учитывая, что сигналы с длинами волн ниже 530 нм сильно зависят от каротиноидов, это может привести к неверной интерпретации измеренного уменьшения поглощения при выборе длины волны, на которую влияют как радикал DPPH, так и абсорбционные свойства экстракта, как это происходит для экстрактов, содержащих каротиноиды. В значительной степени этот вид помех может быть устранен путем измерения оптической плотности эталонного образца, содержащего тот же экстракт, что и образец, содержащий DPPH.

Наши усилия по количественному определению общего содержания каротиноидов в экстрактах показывают важность растворителя, выбранного для экстракции образцов.Метанол извлекает каротиноидные пигменты более эффективно, чем любой из других протестированных растворителей.

Обсуждение

Мы использовали два спектрофотометрических метода, которые включают захват свободных радикалов в растворе с помощью DPPH и оценку общего антиоксидантного потенциала (FRAP), чтобы предоставить дополнительные источники доказательств различных антиоксидантных потенциалов экстрактов из C. лекарственный цветков. Сопоставляя состав фенольных соединений с антиоксидантным действием в тканях цветов, мы обнаружили, что экстракты из C.officinalis сорт Пламен (P 2 ) обладал более высоким антиоксидантным потенциалом, чем экстракты из сорта Petran (P 1 ). Связь между антиоксидантной активностью и содержанием флавоноидов не была линейной, что позволяет предположить, что антиоксидантная активность зависит от общего содержания полифенолов. Летучие органические биосоединения напрямую поддаются анализу с помощью газовой хроматографии, метода непревзойденной разделительной способности.

Флавоноиды считаются предпочтительными биосоединениями в качестве хемотаксономических маркеров растений, поскольку они демонстрируют большое структурное разнообразие и химически стабильны.

В разработанной в данной работе методике идентификации и количественного определения основных фенольных соединений по образцам использовались более доступные методы FC для определения полифенолов.

Метод, основанный на классических нормах и стандартных рабочих процедурах, разработанных в отделе биохимии, дал каждому критерию валидации значение, соответствующее ограничениям ранее упомянутых норм.

Выводы

Антиоксидантные компоненты в экстрактах идентифицировали с помощью комбинированных методов ВЭЖХ и спектрофотометрического анализа.С помощью спектрофотометрического анализа экстрактов в УФ-видимом диапазоне мы идентифицировали определенные фенольные кислоты и флавоноиды.

Метанол позволяет более эффективно извлекать флавоноиды, чем другие исследованные растворители. Наибольшая антиоксидантная активность, связанная с содержанием полифенолов, была получена для экстрактов, приготовленных с использованием метанола. Биохимический анализ определил содержание пигментов-ассимиляторов, а также флавоноидов, которые были выражены как эквиваленты QE. После получения спектрофотометрической дозировки флавоноидов, выраженной в QE, значения включали следующие: 96.17 / 34,8 QEmg / 100 мл.

Согласно Европейской фармакопее минимальным условием качества было 0,4% общих флавоноидов, выраженных в QE. Качество сырья для бархатцев C. officinalis ( Flores Calendulae ) было обусловлено основным содержанием флавонов и полифенолов, которые накапливались в период цветения.

Методы

Образцы растений

Растения были собраны с поля на учебной базе USAMVB Timisoara.Два типа образцов растений, сорт Petran (P 1 ) и Plamen (P 2 ), были собраны и помечены на месте с использованием стандартных методов (сорта выращивались в одинаковых условиях).

Образцы растений, которые были сохранены в качестве гербарных образцов, были идентифицированы с использованием стандартного эталона для этой цели [42], по сравнению с образцами из Департамента растительных ресурсов и идентифицированы с помощью таксономистов из Департамента фитотехники растений в USAMVB Тимишоара.

Экстракция активных биологических соединений

Для экстракции использовались четыре растворителя: метанол (80%), этанол (96%), изопропанол (100%) и этанол (60%). Общий процесс мацерации в небольшом масштабе включал помещение измельченного соответствующим образом растительного материала или умеренно крупного порошка, изготовленного из него, в закрытую емкость и добавление выбранного растворителя, чтобы дать растворителю достаточно времени для проникновения через клеточную стенку для растворения компонентов внутри клетки и для того, чтобы полученный раствор проник через клеточную стенку наружу.Поскольку система статична, за исключением случайного встряхивания, процесс экстракции происходит за счет молекулярной диффузии, которая очень медленная. Закрытый сосуд используется для предотвращения испарения растворителя во время периода экстракции и, таким образом, позволяет избежать вариаций от партии к партии.

В конце процесса мацерации, когда будет достигнуто равновесие, раствор фильтруют, пропуская через специальный пресс.

Концентрации активных компонентов в процеженных и сцеженных жидкостях, иногда называемых мисцеллой, идентичны, поэтому их можно комбинировать.Учитывая, что отжатая жидкость может быть мутной с коллоидными и мелкими частицами, часто требуется определенное время для коагуляции и осаждения твердых частиц.

Осевший материал фильтруют с помощью фильтр-пресса или любого другого подходящего устройства.

Метод экстракции мацерацией - самый простой неизбирательный метод. C. officinalis. цветы выдерживали в холодной среде в контакте с растворителем при комнатной температуре (17-22 ° C) в течение 14 часов, периодически перемешивая перед отделением экстракта.Дополнительный раунд (ы) мацерации повысил эффективность процесса. Экстрагированный продукт сначала смешивали с 1 / 2-2 / 3 от общего количества растворителя, после чего жидкость отделяли и высвобождали остаток.

Он вступает в контакт с остальной частью растворителя, в результате чего добывается одна девятая часть раствора. Две жидкости экстрагируют и фильтруют вместе еще через 24 часа.

Из-за относительно пониженной термостойкости природных ароматических соединений процесс проводили в присутствии антиоксиданта аскорбиновой кислоты (0.5% мас. / Об.) [43]. Скорость экстракции (1:10 г порошка цветков / мл растворителя).

Высокоэффективная жидкостная хроматография (ВЭЖХ)

Полифенолсодержащие экстракты цветков C. officinalis разделяли на колонке C 18 (150 мм × 4,6 мм, 3 мкм) с подвижной фазой, состоящей из трех различных растворителей, используя аппарат Agilent 1100 HPLC. Скорость потока составляла 0,7 мл / мин, а объем впрыска составлял 20 мкл. Для первой системы разделения (тройной растворитель), которая использовалась для разделения флаванолов и фенольных кислот, исходная подвижная фаза состояла из 2% уксусной кислоты в воде / метаноле.Для разделения флавонолов во второй системе (бинарный растворитель: 0,25 мМ фосфатный буфер, pH = 2,5 / ацетонитрил) полифенольные соединения разделяли с использованием третьей системы (бинарный растворитель: 0,1% муравьиная кислота в воде / метаноле). Температуру колонки устанавливали на 20 ° C.

Фенольные соединения обнаружены при 260 нм. Разделенные соединения идентифицировали путем сравнения их времени удерживания (Rt) и УФ-спектров со спектрами аутентичных стандартов. Соединения были определены количественно с использованием стандартной калибровочной кривой.

Общее содержание фенолов и флавоноидов было определено как сумма связанных идентифицированных фенольных соединений. Соединения были идентифицированы путем сравнения со стандартами каждого идентифицированного соединения с использованием Rt, профиля спектра поглощения, а также путем анализа образцов после добавления чистых стандартов [35].

Общее содержание полифенолов

Общее содержание полифенолов было рассчитано с использованием реагента FC и Na 2 CO 3 10%; Впоследствии максимальное поглощение оценивали по полученной окраске относительно калибровочной кривой.Общее содержание фенольных соединений оценивали с помощью колориметрии, основанной на химическом восстановлении смеси оксидов вольфрама и молибдена с образованием синего продукта, который сильно поглощает при 760 нм.

Образование голубых соединений, полученных из FC-реактивных фенолов, не зависело от структур фенольных соединений, что позволило количественно оценить полный набор фенольных соединений из растительных экстрактов. Примерно 10 г измельченного растительного материала экстрагировали 100 мл растворителя.Общую концентрацию фенольных соединений в экстракте рассчитывали путем сравнения с кривой, построенной аналогичным образом на основе измерения, выполненного с использованием известных концентраций GA в диапазоне 0-00 мкг GA / 100 мл. Общее содержание фенолов в образцах выражали в эквивалентах GA (мг) на грамм высушенного растительного материала.

Уровни полифенолов выражали в мг / г эквивалента GA по отношению к конечной концентрации 20 мкг / мл.

Общее содержание флавоноидов

Суммарный уровень всех флавоноидов рассчитывали реакцией с 3% -ным (мас. / Об.) Раствором AlCl 3 (безводная соль), приготовленным в этаноле.

Концентрации коррелировали со значениями абсорбции с помощью калибровочной кривой, построенной с использованием известных концентраций QE. Общее содержание флавоноидов, выраженное в мг / г (эквиваленты QE), было связано с конечной концентрацией на 20 мкг / мл.

Оценка антиоксидантной активности с использованием DPPH

Примерно 10 г измельченного растительного материала экстрагировали в 100 мл 80% -ного водного раствора этанола (или других растворителей) при комнатной температуре в течение 1 часа.

Экстракты фильтровали, и фильтры оставляли испаряться в сухой среде.

Процентную активность по улавливанию свободных радикалов определяли по формуле (1), где Ai было абсорбцией до добавления тестируемого экстракта, а Af было значением абсорбции после 5-минутного времени реакции: Ai

(1)

Эффект нейтрализации свободного радикала DPPH◦ был рассчитан при трех различных концентрациях метанольных и этанольных экстрактов: порции 0,05 мл экстрактов 10, 5 и 2,5 мг / мл смешивались с 2,95 мл раствора. DPPH◦ в кювете, используемой для спектрофотометрии.

По прошествии 5 минут реакции абсорбция при 420 нм сравнивалась с поглощением метанола. QE использовали в качестве положительного контроля. При концентрации 2,5 мМ QE был способен полностью нейтрализовать (уровень использованного радикала DPPH◦).

Анализ ферроредуцирующей антиоксидантной силы (FRAP)

Мы использовали простой спектрофотометрический метод для оценки антиоксидантной способности растительных экстрактов. Это включало восстановление трипиридилтриазина трехвалентного железа [Fe (III) -TPTZ] до окрашенного трипиридилтриазина двухвалентного железа [Fe (II) -TPTZ] при низком pH.

Цветной продукт сильно поглощает при длине волны 593 нм.

Анализ пигментов

Все образцы экстрагировали ацетоном. Пигменты экстрагировали из цветка C. officinalis с использованием 80% ацетона. Мы использовали удельные коэффициенты поглощения хлорофиллов a и b и каротиноидов ( Car ) для оценки их уровней с помощью спектрофотометрии. Все хлорофиллы содержали две основные полосы поглощения излучения: одну на синей стороне или около УФ части электромагнитного спектра, а другую - на красной стороне или около ИК области электромагнитного спектра.Отсутствие значительного поглощения в зеленой части спектра придает хлорофиллам характерный зеленый или сине-зеленоватый цвет.

Этот метод определяет количество (мг) в 100 мл экстракта каротиноидов. Составы пигментов, рассчитанные в соответствии с уравнениями 2, 3 и 4:

Chl a (мкг / г сухого вещества) = (15 . 65A 666 -7 . 34A 653 )

(2 )

Chl b (мкг / г сухого вещества) = (27 . 05A 653 - 11 .

Реагенты и другие материалы

QE и GA были получены от Sigma-Aldrich (Сент-Луис, Миссури, США), тогда как все остальные реагенты были получены от Merck. Все химические вещества и реагенты были аналитической чистоты.

Статистический анализ

Все результаты спектрофотометрических определений флавонов и полифенолов были воспроизведены после установления доверительного интервала, рассчитанного как минимум для пяти определений.Статистические различия между средними значениями были определены с использованием двустороннего парного t-критерия Стьюдента.

Сокращения

DPPH: 2,2-дифенил-1-пикрилгидразил; FRAP: восстановительная способность железа; UV-VIS: в ультрафиолетовом диапазоне; ВЭЖХ: высокоэффективная жидкостная хроматография; QE: кверцетин; GA: галловая кислота; ФК: Фолин-Чокальтеу; [Fe (III) -TPTZ]: трипиридилтриазин трехвалентного железа; [Fe (II) -TPTZ]: трипиридилтриазин двухвалентного железа; Автомобиль: каротиноиды; Chl a / Chl b : хлорофиллы a и b .

Конкурирующие интересы

Авторы заявляют об отсутствии конкурирующих интересов.

Вклад авторов

МБ задумал исследование, участвовал в разработке и координации экспериментов и интерпретации данных, а также помог разработать рукопись. CZC произвел образцы, провел анализ данных и интерпретацию данных. Все авторы прочитали и одобрили окончательную рукопись.

Дополнительный материал

Дополнительный файл 1:

Таблица 1– Относительные уровни соединений от C.лекарственный , обладающий антиоксидантным потенциалом .

Дополнительный файл 2:

Таблица 2 - Спектрофотометрически определенные каротиноиды цветка C. officinalis в различных растворителях .

Благодарности

Этот документ был опубликован в рамках проекта « Школа постдокторантуры по сельскому хозяйству и ветеринарной медицине », POSDRU / 89 / 1.5 / S / 62371, софинансируемого Европейским социальным фондом через Отраслевую оперативную программу для человека. Развитие ресурсов 2007-2013 гг.

Ссылки

  • Basch E, Bent S, Foppa I, Haskmi S, Kroll D, Mele M, Szapary P, Ulbricht C, Vora M, Yong S. Marigold ( Calendula officinalis L.): подтверждено доказательствами систематический обзор Natural Standard Research Collaboration. J Herb Pharmacother. 2006; 6: 135–59. DOI: 10.1080 / J157v06n03_08. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Календула лекарственная -L. (HTML) Plants For A Future (PFAF) http://www.pfaf.org/user/Plant.aspx?LatinName=Calendula+officinalis Дата обращения 2011/11/04.
  • Интерактивная флора Северо-Западной Европы. Календула лекарственная. Проверено 12 августа 2011.
  • Национальные институты здравоохранения. «Календула» (HTML). Травы и пищевые добавки. Национальная медицинская библиотека США; Проверено 19 октября 2011. [Google Scholar]
  • Muley BP, Khadabadi SS, Banarase NB. Фитохимические компоненты и фармакологическая активность Календула лекарственная Linn (Asteraceae) Trop J Pharm Res. 2009. 8: 455–465. [Google Scholar]
  • Танака Т., Мацуо И., Куно И.Обзор: химия вторичных полифенолов, образующихся при переработке чая и отдельных пищевых продуктов. Int J Mol Sci. 2010; 11: 14–4. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
  • Chakraborthy GS. Фитохимический скрининг экстракта листьев Calendula Officinalis Linn методом ТСХ. Int J Res Ayurveda Pharma. 2010; 1: 131–134. [Google Scholar]
  • Neukiron H, D'Ambrosio M, Dovia J, Guerriero A. Одновременное количественное определение восьми тритерпеноидных моноэфиров в цветках 10 разновидностей Calendula officinalis L.и характеристика нового моноэфира тритерпеноида. Фитохим Анал. 2004; 15: 30–35. DOI: 10.1002 / pca.739. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Джулиано Дж., Тавацца Р., Директто Дж., Бейер П., Тейлор М.А. Метаболическая инженерия биосинтеза каротиноидов в растениях. Trends Biotechnol. 2008. 26: 139–145. DOI: 10.1016 / j.tibtech.2007.12.003. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Кишимото С., Маока Т., Сумитомо К., Омия А. Анализ каротиноидного состава лепестков календулы ( Calendula officinalis L.) Biosci Biotechnol Biochem. 2005; 69: 2122–8. DOI: 10.1271 / bbb.69.2122. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Preethi KC, Kuttan R. Ранозаживляющая активность цветочного экстракта Calendula officinalis . J Basic Clin Physiol Pharmacol. 2009; 20: 73–9. [PubMed] [Google Scholar]
  • Preethi KC, Kuttan G, Kuttan R. Антиоксидантный потенциал Календула лекарственная Цветки in vitro и in vivo . Pharmaceutical Biol. 2006. 44: 691–697. DOI: 10.1080/13880200601009149. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Guinot P, Gargadennec A, Valette G, Fruchier A, Andary C. Первичные флавоноиды в красителе календулы: экстракция, структура и участие в процессе окрашивания. Фитохим Анал. 2008; 19: 46–51. DOI: 10.1002 / pca.1014. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Braga PC, Dal Sasso M, Culici M, Spallino A, Falchi M, Bertelli A, Morelli R, Lo Scalzo R. Антиоксидантная активность экстракта Calendula officinalis : ингибирующие эффекты на хемилюминесценция вспышек нейтрофилов человека и спектроскопия электронного парамагнитного резонанса.Фармакология. 2009; 83: 348–55. DOI: 10,1159 / 000217583. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Мецзомо Н., Мартинес Дж., Феррейра С.С. Экономическая жизнеспособность SFE из персика, миндаля, мяты и календулы. J Food Eng. 2011; 103: 473–479. DOI: 10.1016 / j.jfoodeng.2010.10.032. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Хэдфилд Р.А., Влахович Т.К., Хан Т. Использование календулы для лечения кожных заболеваний в подиатрической области. Голеностопный сустав стопы J. 2008; 1: 1–8. DOI: 10.1186 / 1757-1146-1-1. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Мулей Б.П., Хадабади С.С., Банарас Н.Б.Фитохимические компоненты и фармакологическая активность Календула лекарственная Linn (Asteraceae) Tropical J Pharm Res. 2009. 8: 455–465. [Google Scholar]
  • Сильва Э. Дж. Р., Гонсалвес Э. С., Агиар Ф., Эвенсио Л. Б., Лира ММА, Коэльо MCOC, Фрага MCCA, Wanderley AG. Токсикологические исследования водно-спиртового экстракта Календулы лекарственной L. Фитотерапевтические исследования. 2007. 21: 332–336. DOI: 10.1002 / ptr.2009. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Naguib NY, Khalil MY, El Sherbeny SE.Сравнительное исследование продуктивности и химических составляющих различных источников и видов растений календулы , подвергшихся воздействию двух листовых удобрений. J Appl Sci Res. 2005; 1: 176–189. [Google Scholar]
  • Халид К.А., Тейшейра да Силва Дж.А. Урожайность, содержание эфирного масла и пигмента в цветочных головках Calendula officinalis L., культивируемых в условиях солевого стресса. Sci Hort. 2010; 126: 297–305. DOI: 10.1016 / j.scienta.2010.07.023. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Паолини Дж., Барбони Т., Дежобер Дж. М., Джабу Н., Музелли А., Коста Дж.Химический состав, внутривидовые и сезонные колебания эфирных масел Calendula arvensis L. Biochem Syst Ecol. 2010. 38: 865–874. DOI: 10.1016 / j.bse.2010.07.009. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Fronza M, Heinzmann B, Hamburger M, Laufer S, Merfort I. Определение раневого эффекта экстрактов календулы с использованием анализа царапин с фибробластами 3T3. J Ethnopharmacol. 2009; 126: 463–467. DOI: 10.1016 / j.jep.2009.09.014. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Безбрадица Д., Милич-Ашкрабич Дж., Петрович С.Д., Шилер-Маринкович С.Исследование влияния растворителя на кинетику разложения каротиноидов в масляных экстрактах C. officinalis . J Serb Chem Soc. 2005. 70: 115–124. DOI: 10.2298 / JSC0501115B. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Лу С., Ли Л. Метаболизм каротиноидов: биосинтез, регуляция и не только. J Integrative Plant Biol. 2008. 50: 778–785. DOI: 10.1111 / j.1744-7909.2008.00708.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Fonseca YM, Catini CD, Vicentini FTMC, Nomizo A, Gerlach RF, Fonseca MJV.Защитный эффект экстракта Calendula officinalis против окислительного стресса, вызванного ультрафиолетом B, в коже: оценка снижения уровня глутатиона и секреции матриксной металлопротеиназы. J Ethnopharmacol. 2010; 127: 596–601. DOI: 10.1016 / j.jep.2009.12.019. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Ириани Р., Мальдонаде Д., Родригес-Амайя Б., Адилма Р., Скампарини П. Каротиноиды дрожжей, выделенные из экосистемы Бразилии. Food Chem. 2008; 107: 145–150. DOI: 10.1016 / j.foodchem.2007.07.075.[CrossRef] [Google Scholar]
  • Раал А., Кирсипуу К. Общее содержание флавоноидов в сортах Calendula officinalis L., происходящих из разных стран и возделываемых в Эстонии. Nat Prod Res. 2011; 25: 658–62. DOI: 10.1080 / 14786419.2010.528417. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Прити К., Чандран Р.К. Влияние экстракта цветков Calendula officinalis на белки острой фазы, механизм антиоксидантной защиты и образование гранулем во время термических ожогов.J Clin Biochem Nutr. 2008; 43: 58–64. DOI: 10.3164 / jcbn.2008043. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Фариа Р.Л., Кардосо Л.М., Акисуэ Дж., Перейра, Калифорния, Джункейра Дж. С., Хорхе А.О., Сантос Жуниор П.В. Противомикробная активность Calendula officinalis, Camellia sinensis и хлоргексидина в отношении прикрепления микроорганизмов к швам после удаления непрорезавшихся третьих моляров. J Appl Oral Sci. 2011; 19: 476–82. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
  • Butnariu M, Palicica RD.Buletinul Oficial de Proprietate Industriala, Патентные заявки. Vol. 3. ОСИМ, РО122836-Б1; 2010. Аптечная мазь на основе цветков календулы, выращенных на обогащенных цинком почвах, и способ ее приготовления; С. 1–18. [Google Scholar]
  • Preethi KC, Siveen KS, Kuttan R, Kuttan G. Ингибирование метастазирования клеток меланомы B16F-10 у мышей C57BL / 6 с помощью экстракта цветков Calendula officinalis L. Азиатский Pac J Cancer Prev. 2010; 11: 1773–9. [PubMed] [Google Scholar]
  • Ло Дж., Чжан Л., Ван М., Хе С., Ян Ю.Определение кверцетина и кемпферола в растениях Dysosma методом RP-HPLC. Чжунго Чжун Яо За Чжи. 2010; 35: 3021–3023. [PubMed] [Google Scholar]
  • Даниэльски Л., Кампос LMAS, Брешиани Л.Ф.В., Хенсе Х., Юнес Р.А., Феррейра С.С. Олеорезин календулы ( Calendula officinalis L.): растворимость в SC-CO 2 и профиль состава. Chem Eng Proc. 2007. 46: 99–106. DOI: 10.1016 / j.cep.2006.05.004. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Раал А., Кирсипуу К., Муст Р., Тенно С. Содержание общих каротиноидов в Calendula officinalis L.из разных стран, выращиваемых в Эстонии. Nat Prod Commun. 2009; 4: 35–8. [PubMed] [Google Scholar]
  • Газим З., Резенде С., Фрага С., Диас Филхо Б., Накамура С., Кортез Д. Анализ эфирных масел из Календулы лекарственной , растущей в Бразилии, с использованием трех различных процедур экстракции. Brazil J Pharm Sci. 2008; 44: 391–395. [Google Scholar]
  • Сильва Э. Дж., Коста-Сильва Дж. Х., Эвенсио Л. Б., Фрага Мдо С., Коэльо М. С., Wanderley AG. Репродуктивная оценка водно-спиртового экстракта календулы лекарственной календулы лекарственной L.у крыс линии Вистар. Phytother Res. 2009; 23: 1392–8. DOI: 10.1002 / ptr.2785. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Лич MJ. C. officinalis и заживление ран: систематический обзор. Раны. 2008. 20: 236–243. [PubMed] [Google Scholar]
  • Око О.О., Садименко А.А., Афолаян А.Дж. Влияние возраста на урожайность и состав эфирных масел Calendula officinalis . J Appl Sci. 2007. 7: 3806–3810. [Google Scholar]
  • Лю Цзинь, Ян Х, Ван К., Куанг Т., Чжан Дж., Гуй Л., Ань Х, Чанг В.Кристаллическая структура основного светособирающего комплекса шпината при разрешении 2,72 Å. Природа. 2004. 428: 287–292. DOI: 10,1038 / природа02373. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Гуськов А., Керн Дж., Габдулхаков А., Брозер М., Зуни А., Сенгер В. Фотосистема II цианобактерий с разрешением 2,9 Å и роль хинонов, липидов, каналов и хлорида. Nat Struct Mol Biol. 2009. 16: 334–342. DOI: 10.1038 / nsmb.1559. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Баллоттария М., Жирардона Дж., Далл'Остоа Л., Басси Р.Эволюция и функциональные свойства светособирающих комплексов Photosystem II у эукариот. Biochim Biophys Acta Bioenerg. 2012; 1817: 143–157. DOI: 10.1016 / j.bbabio.2011.06.005. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Европейская фармакопея. PHARMEUROPA. 2011; 23 http: //www.edqm. eu / en / News-and-General-Information-43.html Дата обращения 2015/10/15. [Google Scholar]
  • Granger KL, Gallagher RS, Fuerst EP, Alldredge JR. Сравнение методов фенольной экстракции семян и методов анализа. Методы Ecol Evol.2011; 2: 691–698. DOI: 10.1111 / j.2041-210X.2011.00120.x. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Тутин Т.Г., Хейвуд В.Х., Берджес Н.А., Валентайн Д.Х., Уолтерс С.М., Уэбб Д.А., редактор. Набор в мягкой обложке. Vol. 5. 2010. Флора европейская; п. 135. [Google Scholar]
  • Ph. Eur. Справочные стандарты. http://www.edqm.eu/en/Ph-Eur-Reference-Standards-627.html Источник 2011/10/16.
  • ВОЗ. Международные химические эталонные вещества. (ICRS) 2010. http://www.edqm.eu/en/WHO-International-Chemical-Reference-Substances-ICRS-1393.html Проверено 18 октября 2011 г.
  • ISO-14502-1: 2005; и AOAC 941.15.AOAC, 2003

Оценка биологически активных соединений цветков календулы лекарственной с использованием спектрофотометрии

Chem Cent J. 2012; 6: 35.

# 1 и 2

Моника Бутнариу

1 Кафедра химии и биохимии, Банатский университет сельскохозяйственных наук и ветеринарной медицины, Тимишоара, Калеа Арадулуи, no.119, Тимишоара, 300645 Румыния

Кристина Жепа Корадини

2 Кафедра фитотехники, Банатский университет Банатский университет сельскохозяйственных наук и ветеринарной медицины, Тимишоара, Калеа Арадулуи, no. 119, Тимишоара, 300645 Румыния

1 Кафедра химии и биохимии, Банатский университет сельскохозяйственных наук и ветеринарной медицины, Тимишоара, Калеа Арадулуи, no. 119, Тимишоара, 300645 Румыния

2 Кафедра фитотехники, Банатский университет Банатский университет сельскохозяйственных наук и ветеринарной медицины, Тимишоара, Калеа Арадулуи, no.119, Тимишоара, 300645 Румыния

Автор, ответственный за переписку.

# Распространяется поровну.

Поступило 01.04.2012 г .; Принято 27 апреля 2012 г.

Эта статья цитируется в других статьях в PMC.
Дополнительные материалы

Дополнительный файл 1 Таблица 1– Относительные уровни соединений из экстрактов C. officinalis , обладающих антиоксидантным потенциалом .

GUID: D746C5B3-F4DF-48BF-8FF5-562FD1FE1F75

Дополнительный файл 2 Таблица 2 - Спектрофотометрически определенные каротиноиды C.лекарственный цветок в разных растворителях .

GUID: 60E199FB-91E7-4511-A51D-E1289B3E9C18

Аннотация

Предпосылки

Это исследование было направлено на количественное определение активных биологических соединений в цветках C. officinalis . Основываясь на действующих веществах и биологических свойствах цветков бархатцев, описанных в литературе, мы стремились получить и охарактеризовать молекулярный состав экстрактов, приготовленных с использованием различных растворителей.Антиоксидантную способность экстрактов оценивали с помощью спектрофотометрии для измерения как оптической плотности колориметрического акцептора свободных радикалов 2,2-дифенил-1-пикрилгидразила (DPPH), так и общего антиоксидантного потенциала с использованием анализа восстанавливающей способности железа (FRAP).

Результаты

Спектрофотометрические анализы в ультрафиолетовой и видимой (UV-VIS) области позволили идентифицировать и охарактеризовать весь спектр фенольных и флавоноидных кислот, а высокоэффективная жидкостная хроматография (ВЭЖХ) использовалась для идентификации и количественного определения фенольных соединений ( в зависимости от метода добычи).Метанол обеспечивает более эффективное извлечение флавоноидов, чем другие испытанные растворители.

Антиоксидантная активность метанольных экстрактов коррелировала с содержанием полифенолов.

Выводы

УФ-видимые спектры пигментов-ассимиляторов (например, хлорофиллов), полифенолов и флавоноидов, экстрагированных из цветков C. officinalis , заключались в количественной оценке соединений, поглощающих волны с длиной волны более 360 нм.

Общие сведения

Благодаря особому составу и экономической ценности выращивание бархатцев ( C.officinalis ) продолжает расти [1], а Европейский Союз спонсировал несколько программ по изучению и эксплуатации этого вида [2-4]. Лечебные свойства бархатцев объясняются разнообразием содержащихся в них биологически активных веществ [5]. Благодаря своим противовоспалительным, заживляющим и антисептическим свойствам экстракты C. officinalis применяются наружно для лечения различных кожных язв, экземы и конъюнктивита, а также внутрь для облегчения боли, возникающей при язве желудка и воспалении.Бархатцы известны своими спазмолитическими, расслабляющими, желчегонными, потогонными и ранимыми свойствами [6]. Как фенольные соединения (флавоноиды и фенольные кислоты), так и сапонины содержатся в большом количестве в ноготках [7].

C. officinalis также содержит каротиноиды и тритерпеновые спирты как в свободном, так и в этерифицированном виде [8,9]. Каротиноидные пигменты, производные C. officinalis [10] и полиненасыщенные жирные кислоты, такие как календовая кислота [5], обладают воспалительными свойствами in vivo и ингибирующими свойствами in vitro [11].

Бархатцы также характеризуются присутствием некоторых важных поликарбогидратов [12], которые растворимы в воде и играют роль в спаивании тканей и контроле клеточной проницаемости [13-15]. Другими веществами, идентифицированными в экстрактах C. officinalis , являются белки и аминокислоты [16], насыщенные углеводороды [17], витамин C [18] и минеральные вещества [19]. Благодаря своему сильному аромату [20] эфирные масла могут привлекать насекомых, тем самым косвенно способствуя опылению [21-23].

Некоторые летучие вещества [24] представляют собой конечные продукты анаэробного биоразложения углеводов [25] и накапливаются до уровней, сопоставимых с уровнями, синтезируемыми в клетках [26].

Помимо их роли в качестве антиоксидантов [27], полифенолы (особенно флавоноиды) обладают антимикробными свойствами [28,29].

В наших предыдущих исследованиях использовалась хроматография, чтобы продемонстрировать, что бархатцы являются хорошим источником природных антиоксидантов, в частности полифенольных веществ.

Полифенолы обычно характеризуются своим специфическим хроматографическим поведением и характерными спектрами UV-VIS.

Целью данного исследования было использование спектрофотометрии для оценки содержания фенольных и флавоноидных соединений, а также активности по улавливанию радикалов в экстрактах из различных образцов календулы. Основные фенольные соединения C. officinalis , протестированные в этом исследовании, были систематически идентифицированы путем сравнения профилей ВЭЖХ образцов с профилями подлинных фенольных стандартов и опубликованными данными (информация в патентах RO122836 - B1) [30]. Мы использовали ВЭЖХ для одновременного разделения, обнаружения и количественного определения фенольных соединений, хлорофиллов и каротиноидов за один проход.Наличие метода получения биоактивного профиля различных матриц растительности должно помочь удовлетворить растущие потребности в информации о биологических соединениях и их свойствах не только о цветках календулы, но и о других естественных источниках пищи.

Результаты

Спектрофотометрические анализы

Настоящее исследование описывает метод Folin-Ciocalteu (FC) для быстрого анализа и количественной оценки. Быстрый метод был проверен с точки зрения повторяемости, воспроизводимости, линейности, точности, затем был проведен оптимизированный аналитический метод для количественного определения фенольных соединений.Спектрофотометрические анализы для определения общего содержания флавоноидов и полифенолов в растительных экстрактах были адаптированы для использования со спектрофотометром UV-VIS (PG Instruments) и soft UV WIN 5.05 для измерения оптической плотности контрольных растворов (QE и GA) и оптической плотности образцов. из экстрактов растений [31]. Спектрофотометрические анализы для расчета концентраций кверцетина (QE) основывались на измерениях оптической плотности при 420 нм. Спектрофотометрическое определение содержания галловой кислоты (GA) рассчитывали при 765 нм.Линейность метода проверяли методом наименьших квадратов, который применялся в диапазоне концентраций 2-32 мкг / мл для QE и 1-10 мкг / мл для GA, с коэффициентом корреляции R 2 > 0,99. Для проверки результатов повторяющиеся калибровочные кривые сравнивали с эталонными веществами в течение трех дней подряд. Наблюдалась небольшая разница между калибровочными кривыми, построенными для QE, тогда как кривые для GA были почти идентичны. Все коэффициенты детерминации уравнений калибровочных прямых (R 2 ) были больше 0.99. Точность метода рассчитывалась путем сравнения определенного количества вещества с количеством вещества, рассчитанным на основе статистического анализа с помощью программы ORIGIN 7 (версии Standard / Professional). Для всех контрольных образцов различия между экспериментальными образцами и стандартами никогда не были статистически значимыми ( P <0,05). Точность (процентное отклонение определенной концентрации по отношению к рассчитанной концентрации) и прецизионность (стандартное отклонение / коэффициент вариации) методов всегда находились в пределах допустимых диапазонов (± 15% от среднего).

Чувствительность метода рассчитывалась с использованием 2 мкг / мл QE и 1 мкг / мл GA. В обоих случаях, когда точность и прецизионность, указанные в допустимых пределах в таких определениях, складывались в предел количественного определения (± 20%).

Фитохимические вещества и, в частности, соединения фенольных кислот и флавоноидов, присутствующие в цветках C. officinalis , могут частично отвечать за эти преимущества для здоровья благодаря своей антиоксидантной активности. В настоящем исследовании основные цели заключаются в выделении общего количества флавоноидов и полифенольных соединений с помощью спектрофотометрических анализов в ультрафиолетовом и видимом диапазоне.Чтобы быстро различать различные образцы, флавоноиды экстрагировали из цветов путем погружения (без разрушения ткани) в растворители (метод ВЭЖХ, мы исследуем патент RO122836-B1).

Высокоэффективная жидкостная хроматография

В соответствии с международными стандартами Ассоциации по улучшению органических культур (OCIA), Международной федерации движений за органическое сельское хозяйство (IFOAM) и Национальной программы органического сельского хозяйства США, использование экологически чистых материалов Для получения таких натуральных ингредиентов необходимы дружественные процедуры экстракции, такие как мацерация.

Мы использовали объективный анализ ВЭЖХ в сочетании со спектрофотометрическими методами для исчерпывающей характеристики полифенолов, включая соединения с антиоксидантным потенциалом, такие как флаванолы, фенольные кислоты и каротиноиды, из экстракта цветков C. officinalis . Наиболее распространенные фенольные соединения были количественно определены с помощью ВЭЖХ по сравнению с внешними стандартами известных фенольных соединений.

Общее содержание полифенолов, флавоноидов и оценка антиоксидантной активности с использованием DPPH и FRAP

Концентрации полифенолов в экспериментальных образцах варьировались в зависимости от типа растительного материала и растворителя, используемого для экстракции.Значения, определенные с использованием метода DPPH (дополнительный файл 1 и рисунок), показали, что антиоксидантная активность была значительно выше у сорта P 2 , чем у сорта P 1 . Это можно объяснить большей ферментативной активностью в первом. Измерения проводились в диапазоне длин волн от 440 до 750 нм. Все сканы, полученные с использованием экспериментальных образцов, сравнивали со сканированными изображениями, полученными с использованием чистых растворителей. Измерения проводили через 30 минут после добавления DPPH, чтобы обеспечить достаточно времени для реакции антиоксидантов с DPPH.Как показано в Дополнительном файле 1, изменения оптической плотности на этой длине волны показывают, находятся ли радикалы DPPH в окисленном или восстановленном состоянии. Таким образом, эта длина волны обеспечивает прямой анализ и интерпретацию измеренного уменьшения поглощения. Гидрофильную антиоксидантную активность оценивали с использованием методов FRAP и DPPH. Антиоксидантная активность была выше в образцах из сорта P 2 , чем в образцах из сорта P 1 , возможно, из-за более высоких уровней биосинтеза в первом случае, чем во втором.Использование методов FRAP привело к одинаково малым значениям для всех трех типов экстрактов. Огромное распространение материалов и биологических жидкостей, содержащих биологически активную молекулу, не способствовало принятию общего метода, доступного для экстракции, который можно было бы применять в общих чертах и ​​принимать как стандартизированную технику. Широкий спектр используемых аналитов и растворителей не позволил нам использовать стандартную процедуру экстракции на протяжении всего исследования. Экстракция каротиноидов с использованием униполярных органических растворителей [32], этилового эфира или хлороформа включала мацерацию растительной ткани с последующим механическим встряхиванием и переносом экстрактов в кипящую водяную баню.Для полной экстракции требовалось значительное растирание; потому что униполярный растворитель не проникает через клеточную мембрану для растворения каротиноидов.

Содержание соединений с антиоксидантным потенциалом из экстрактов C. officinalis .

Поскольку свежий материал имеет высокие уровни, его необходимо сначала высушить перед экстракцией смешивающимися растворителями, такими как ацетон, метанол и этанол [33,34]. Тогда растительный материал может быть достаточно безводным, чтобы можно было проводить экстракцию с использованием неводных растворителей.

Целью этой экспериментальной части было количественное определение антиоксидантной активности с помощью спектрофотометрии (дополнительный файл 1). Мы разработали простой и эффективный метод извлечения. Он должен был идентифицировать флавоноиды в его экстрактах, определить количество и сделать прогноз его антиоксидантной способности спектрофотометрическим методом DPPH. Модель улавливания стабильного радикала DPPH является широко используемым методом для оценки способности различных образцов улавливать свободные радикалы.

Анализ пигментов

Органические экстракты содержали каротиноиды, а также некоторые отходы, такие как хлорофилл [35,36]. Анализ результатов Дополнительного файла 2 показывает различия в содержании пигментов-ассимиляторов в проанализированных образцах. Более высокие количества хлорофилла b (рисунок и рисунок) предполагают способность тканей цветка улавливать световое излучение, чтобы повысить способность растений преобразовывать световую энергию в потенциальную химическую энергию.Образцы, которые производят большее количество углеводов, получают из тканей, которые обеспечивают вещества, необходимые для развития [37].

Спектр поглощения 80% метанольных экстрактов цветов C. officinalis .

Спектры поглощения цветков C. officinalis в метаноле 80%, этаноле 96%, изопропаноле 99% и этаноле 60% .

Как сообщалось ранее [38], квантосома (комплекс между фотосинтетическими пигментами и белково-фосфорными мембранами граны) [39] включает 230 молекул хлорофилла (Chl) (160 молекул Chl a и 70 молекул Chl b ) и приблизительно 50 молекул каротиноидов.Молекулы хлорофилла a действуют как реакционные (улавливающие) центры (P 700 в фотосистеме (PS) I и P 680 в PS II). Теоретически соотношение Chl a : Chl b может варьироваться от 1: 2 до 1: 3. Из наших данных для сорта Petran (P 1 ), единственного образца, для которого соотношение между типами хлорофилла a / b хлорофилла в соотношении 1: 2 - метанольный экстракт (образец 1). Соотношение в трех других экстрактах составляло 1: 3.Для экстрактов метанола и этанола сорта Plamen (P 2 ) мы обнаружили соотношение Chl a : Chl b , равное 1: 4. Вариации относительного содержания хлорофиллов a и b могут быть связаны с нарушениями на уровне ФС II [40]. Сканирование длин волн всех экстрактов C. officinalis показано на рисунке. Специфические модели поглощения позволили нам идентифицировать определенные группы молекул и домены. Одна из наиболее важных функций каротиноидов - фотозащита фотосинтетического аппарата путем тушения триплетного хлорофилла, синглетного кислорода и других активных форм.

Каротиноиды являются структурными компонентами светособирающего хлорофилла a / b белковых комплексов PSII (LHCII) и PS I. Они участвуют как в стабилизации тримеров LHCII, так и в сборке мономеров LHCII [41]. Чтобы быть полезным в качестве меры клеточного антиоксидантного потенциала, поглощение на выбранной длине волны должно в основном зависеть от радикала DPPH, а не от помех, вызываемых антиоксидантами, такими как каротиноиды и полиненасыщенные жирные кислоты.Учитывая, что сигналы с длинами волн ниже 530 нм сильно зависят от каротиноидов, это может привести к неверной интерпретации измеренного уменьшения поглощения при выборе длины волны, на которую влияют как радикал DPPH, так и абсорбционные свойства экстракта, как это происходит для экстрактов, содержащих каротиноиды. В значительной степени этот вид помех может быть устранен путем измерения оптической плотности эталонного образца, содержащего тот же экстракт, что и образец, содержащий DPPH.

Наши усилия по количественному определению общего содержания каротиноидов в экстрактах показывают важность растворителя, выбранного для экстракции образцов.Метанол извлекает каротиноидные пигменты более эффективно, чем любой из других протестированных растворителей.

Обсуждение

Мы использовали два спектрофотометрических метода, которые включают захват свободных радикалов в растворе с помощью DPPH и оценку общего антиоксидантного потенциала (FRAP), чтобы предоставить дополнительные источники доказательств различных антиоксидантных потенциалов экстрактов из C. лекарственный цветков. Сопоставляя состав фенольных соединений с антиоксидантным действием в тканях цветов, мы обнаружили, что экстракты из C.officinalis сорт Пламен (P 2 ) обладал более высоким антиоксидантным потенциалом, чем экстракты из сорта Petran (P 1 ). Связь между антиоксидантной активностью и содержанием флавоноидов не была линейной, что позволяет предположить, что антиоксидантная активность зависит от общего содержания полифенолов. Летучие органические биосоединения напрямую поддаются анализу с помощью газовой хроматографии, метода непревзойденной разделительной способности.

Флавоноиды считаются предпочтительными биосоединениями в качестве хемотаксономических маркеров растений, поскольку они демонстрируют большое структурное разнообразие и химически стабильны.

В разработанной в данной работе методике идентификации и количественного определения основных фенольных соединений по образцам использовались более доступные методы FC для определения полифенолов.

Метод, основанный на классических нормах и стандартных рабочих процедурах, разработанных в отделе биохимии, дал каждому критерию валидации значение, соответствующее ограничениям ранее упомянутых норм.

Выводы

Антиоксидантные компоненты в экстрактах идентифицировали с помощью комбинированных методов ВЭЖХ и спектрофотометрического анализа.С помощью спектрофотометрического анализа экстрактов в УФ-видимом диапазоне мы идентифицировали определенные фенольные кислоты и флавоноиды.

Метанол позволяет более эффективно извлекать флавоноиды, чем другие исследованные растворители. Наибольшая антиоксидантная активность, связанная с содержанием полифенолов, была получена для экстрактов, приготовленных с использованием метанола. Биохимический анализ определил содержание пигментов-ассимиляторов, а также флавоноидов, которые были выражены как эквиваленты QE. После получения спектрофотометрической дозировки флавоноидов, выраженной в QE, значения включали следующие: 96.17 / 34,8 QEmg / 100 мл.

Согласно Европейской фармакопее минимальным условием качества было 0,4% общих флавоноидов, выраженных в QE. Качество сырья для бархатцев C. officinalis ( Flores Calendulae ) было обусловлено основным содержанием флавонов и полифенолов, которые накапливались в период цветения.

Методы

Образцы растений

Растения были собраны с поля на учебной базе USAMVB Timisoara.Два типа образцов растений, сорт Petran (P 1 ) и Plamen (P 2 ), были собраны и помечены на месте с использованием стандартных методов (сорта выращивались в одинаковых условиях).

Образцы растений, которые были сохранены в качестве гербарных образцов, были идентифицированы с использованием стандартного эталона для этой цели [42], по сравнению с образцами из Департамента растительных ресурсов и идентифицированы с помощью таксономистов из Департамента фитотехники растений в USAMVB Тимишоара.

Экстракция активных биологических соединений

Для экстракции использовались четыре растворителя: метанол (80%), этанол (96%), изопропанол (100%) и этанол (60%). Общий процесс мацерации в небольшом масштабе включал помещение измельченного соответствующим образом растительного материала или умеренно крупного порошка, изготовленного из него, в закрытую емкость и добавление выбранного растворителя, чтобы дать растворителю достаточно времени для проникновения через клеточную стенку для растворения компонентов внутри клетки и для того, чтобы полученный раствор проник через клеточную стенку наружу.Поскольку система статична, за исключением случайного встряхивания, процесс экстракции происходит за счет молекулярной диффузии, которая очень медленная. Закрытый сосуд используется для предотвращения испарения растворителя во время периода экстракции и, таким образом, позволяет избежать вариаций от партии к партии.

В конце процесса мацерации, когда будет достигнуто равновесие, раствор фильтруют, пропуская через специальный пресс.

Концентрации активных компонентов в процеженных и сцеженных жидкостях, иногда называемых мисцеллой, идентичны, поэтому их можно комбинировать.Учитывая, что отжатая жидкость может быть мутной с коллоидными и мелкими частицами, часто требуется определенное время для коагуляции и осаждения твердых частиц.

Осевший материал фильтруют с помощью фильтр-пресса или любого другого подходящего устройства.

Метод экстракции мацерацией - самый простой неизбирательный метод. C. officinalis. цветы выдерживали в холодной среде в контакте с растворителем при комнатной температуре (17-22 ° C) в течение 14 часов, периодически перемешивая перед отделением экстракта.Дополнительный раунд (ы) мацерации повысил эффективность процесса. Экстрагированный продукт сначала смешивали с 1 / 2-2 / 3 от общего количества растворителя, после чего жидкость отделяли и высвобождали остаток.

Он вступает в контакт с остальной частью растворителя, в результате чего добывается одна девятая часть раствора. Две жидкости экстрагируют и фильтруют вместе еще через 24 часа.

Из-за относительно пониженной термостойкости природных ароматических соединений процесс проводили в присутствии антиоксиданта аскорбиновой кислоты (0.5% мас. / Об.) [43]. Скорость экстракции (1:10 г порошка цветков / мл растворителя).

Высокоэффективная жидкостная хроматография (ВЭЖХ)

Полифенолсодержащие экстракты цветков C. officinalis разделяли на колонке C 18 (150 мм × 4,6 мм, 3 мкм) с подвижной фазой, состоящей из трех различных растворителей, используя аппарат Agilent 1100 HPLC. Скорость потока составляла 0,7 мл / мин, а объем впрыска составлял 20 мкл. Для первой системы разделения (тройной растворитель), которая использовалась для разделения флаванолов и фенольных кислот, исходная подвижная фаза состояла из 2% уксусной кислоты в воде / метаноле.Для разделения флавонолов во второй системе (бинарный растворитель: 0,25 мМ фосфатный буфер, pH = 2,5 / ацетонитрил) полифенольные соединения разделяли с использованием третьей системы (бинарный растворитель: 0,1% муравьиная кислота в воде / метаноле). Температуру колонки устанавливали на 20 ° C.

Фенольные соединения обнаружены при 260 нм. Разделенные соединения идентифицировали путем сравнения их времени удерживания (Rt) и УФ-спектров со спектрами аутентичных стандартов. Соединения были определены количественно с использованием стандартной калибровочной кривой.

Общее содержание фенолов и флавоноидов было определено как сумма связанных идентифицированных фенольных соединений. Соединения были идентифицированы путем сравнения со стандартами каждого идентифицированного соединения с использованием Rt, профиля спектра поглощения, а также путем анализа образцов после добавления чистых стандартов [35].

Общее содержание полифенолов

Общее содержание полифенолов было рассчитано с использованием реагента FC и Na 2 CO 3 10%; Впоследствии максимальное поглощение оценивали по полученной окраске относительно калибровочной кривой.Общее содержание фенольных соединений оценивали с помощью колориметрии, основанной на химическом восстановлении смеси оксидов вольфрама и молибдена с образованием синего продукта, который сильно поглощает при 760 нм.

Образование голубых соединений, полученных из FC-реактивных фенолов, не зависело от структур фенольных соединений, что позволило количественно оценить полный набор фенольных соединений из растительных экстрактов. Примерно 10 г измельченного растительного материала экстрагировали 100 мл растворителя.Общую концентрацию фенольных соединений в экстракте рассчитывали путем сравнения с кривой, построенной аналогичным образом на основе измерения, выполненного с использованием известных концентраций GA в диапазоне 0-00 мкг GA / 100 мл. Общее содержание фенолов в образцах выражали в эквивалентах GA (мг) на грамм высушенного растительного материала.

Уровни полифенолов выражали в мг / г эквивалента GA по отношению к конечной концентрации 20 мкг / мл.

Общее содержание флавоноидов

Суммарный уровень всех флавоноидов рассчитывали реакцией с 3% -ным (мас. / Об.) Раствором AlCl 3 (безводная соль), приготовленным в этаноле.

Концентрации коррелировали со значениями абсорбции с помощью калибровочной кривой, построенной с использованием известных концентраций QE. Общее содержание флавоноидов, выраженное в мг / г (эквиваленты QE), было связано с конечной концентрацией на 20 мкг / мл.

Оценка антиоксидантной активности с использованием DPPH

Примерно 10 г измельченного растительного материала экстрагировали в 100 мл 80% -ного водного раствора этанола (или других растворителей) при комнатной температуре в течение 1 часа.

Экстракты фильтровали, и фильтры оставляли испаряться в сухой среде.

Процентную активность по улавливанию свободных радикалов определяли по формуле (1), где Ai было абсорбцией до добавления тестируемого экстракта, а Af было значением абсорбции после 5-минутного времени реакции: Ai

(1)

Эффект нейтрализации свободного радикала DPPH◦ был рассчитан при трех различных концентрациях метанольных и этанольных экстрактов: порции 0,05 мл экстрактов 10, 5 и 2,5 мг / мл смешивались с 2,95 мл раствора. DPPH◦ в кювете, используемой для спектрофотометрии.

По прошествии 5 минут реакции абсорбция при 420 нм сравнивалась с поглощением метанола. QE использовали в качестве положительного контроля. При концентрации 2,5 мМ QE был способен полностью нейтрализовать (уровень использованного радикала DPPH◦).

Анализ ферроредуцирующей антиоксидантной силы (FRAP)

Мы использовали простой спектрофотометрический метод для оценки антиоксидантной способности растительных экстрактов. Это включало восстановление трипиридилтриазина трехвалентного железа [Fe (III) -TPTZ] до окрашенного трипиридилтриазина двухвалентного железа [Fe (II) -TPTZ] при низком pH.

Цветной продукт сильно поглощает при длине волны 593 нм.

Анализ пигментов

Все образцы экстрагировали ацетоном. Пигменты экстрагировали из цветка C. officinalis с использованием 80% ацетона. Мы использовали удельные коэффициенты поглощения хлорофиллов a и b и каротиноидов ( Car ) для оценки их уровней с помощью спектрофотометрии. Все хлорофиллы содержали две основные полосы поглощения излучения: одну на синей стороне или около УФ части электромагнитного спектра, а другую - на красной стороне или около ИК области электромагнитного спектра.Отсутствие значительного поглощения в зеленой части спектра придает хлорофиллам характерный зеленый или сине-зеленоватый цвет.

Этот метод определяет количество (мг) в 100 мл экстракта каротиноидов. Составы пигментов, рассчитанные в соответствии с уравнениями 2, 3 и 4:

Chl a (мкг / г сухого вещества) = (15 . 65A 666 -7 . 34A 653 )

(2 )

Chl b (мкг / г сухого вещества) = (27 . 05A 653 - 11 .

Реагенты и другие материалы

QE и GA были получены от Sigma-Aldrich (Сент-Луис, Миссури, США), тогда как все остальные реагенты были получены от Merck. Все химические вещества и реагенты были аналитической чистоты.

Статистический анализ

Все результаты спектрофотометрических определений флавонов и полифенолов были воспроизведены после установления доверительного интервала, рассчитанного как минимум для пяти определений.Статистические различия между средними значениями были определены с использованием двустороннего парного t-критерия Стьюдента.

Сокращения

DPPH: 2,2-дифенил-1-пикрилгидразил; FRAP: восстановительная способность железа; UV-VIS: в ультрафиолетовом диапазоне; ВЭЖХ: высокоэффективная жидкостная хроматография; QE: кверцетин; GA: галловая кислота; ФК: Фолин-Чокальтеу; [Fe (III) -TPTZ]: трипиридилтриазин трехвалентного железа; [Fe (II) -TPTZ]: трипиридилтриазин двухвалентного железа; Автомобиль: каротиноиды; Chl a / Chl b : хлорофиллы a и b .

Конкурирующие интересы

Авторы заявляют об отсутствии конкурирующих интересов.

Вклад авторов

МБ задумал исследование, участвовал в разработке и координации экспериментов и интерпретации данных, а также помог разработать рукопись. CZC произвел образцы, провел анализ данных и интерпретацию данных. Все авторы прочитали и одобрили окончательную рукопись.

Дополнительный материал

Дополнительный файл 1:

Таблица 1– Относительные уровни соединений от C.лекарственный , обладающий антиоксидантным потенциалом .

Дополнительный файл 2:

Таблица 2 - Спектрофотометрически определенные каротиноиды цветка C. officinalis в различных растворителях .

Благодарности

Этот документ был опубликован в рамках проекта « Школа постдокторантуры по сельскому хозяйству и ветеринарной медицине », POSDRU / 89 / 1.5 / S / 62371, софинансируемого Европейским социальным фондом через Отраслевую оперативную программу для человека. Развитие ресурсов 2007-2013 гг.

Ссылки

  • Basch E, Bent S, Foppa I, Haskmi S, Kroll D, Mele M, Szapary P, Ulbricht C, Vora M, Yong S. Marigold ( Calendula officinalis L.): подтверждено доказательствами систематический обзор Natural Standard Research Collaboration. J Herb Pharmacother. 2006; 6: 135–59. DOI: 10.1080 / J157v06n03_08. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Календула лекарственная -L. (HTML) Plants For A Future (PFAF) http://www.pfaf.org/user/Plant.aspx?LatinName=Calendula+officinalis Дата обращения 2011/11/04.
  • Интерактивная флора Северо-Западной Европы. Календула лекарственная. Проверено 12 августа 2011.
  • Национальные институты здравоохранения. «Календула» (HTML). Травы и пищевые добавки. Национальная медицинская библиотека США; Проверено 19 октября 2011. [Google Scholar]
  • Muley BP, Khadabadi SS, Banarase NB. Фитохимические компоненты и фармакологическая активность Календула лекарственная Linn (Asteraceae) Trop J Pharm Res. 2009. 8: 455–465. [Google Scholar]
  • Танака Т., Мацуо И., Куно И.Обзор: химия вторичных полифенолов, образующихся при переработке чая и отдельных пищевых продуктов. Int J Mol Sci. 2010; 11: 14–4. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
  • Chakraborthy GS. Фитохимический скрининг экстракта листьев Calendula Officinalis Linn методом ТСХ. Int J Res Ayurveda Pharma. 2010; 1: 131–134. [Google Scholar]
  • Neukiron H, D'Ambrosio M, Dovia J, Guerriero A. Одновременное количественное определение восьми тритерпеноидных моноэфиров в цветках 10 разновидностей Calendula officinalis L.и характеристика нового моноэфира тритерпеноида. Фитохим Анал. 2004; 15: 30–35. DOI: 10.1002 / pca.739. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Джулиано Дж., Тавацца Р., Директто Дж., Бейер П., Тейлор М.А. Метаболическая инженерия биосинтеза каротиноидов в растениях. Trends Biotechnol. 2008. 26: 139–145. DOI: 10.1016 / j.tibtech.2007.12.003. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Кишимото С., Маока Т., Сумитомо К., Омия А. Анализ каротиноидного состава лепестков календулы ( Calendula officinalis L.) Biosci Biotechnol Biochem. 2005; 69: 2122–8. DOI: 10.1271 / bbb.69.2122. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Preethi KC, Kuttan R. Ранозаживляющая активность цветочного экстракта Calendula officinalis . J Basic Clin Physiol Pharmacol. 2009; 20: 73–9. [PubMed] [Google Scholar]
  • Preethi KC, Kuttan G, Kuttan R. Антиоксидантный потенциал Календула лекарственная Цветки in vitro и in vivo . Pharmaceutical Biol. 2006. 44: 691–697. DOI: 10.1080/13880200601009149. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Guinot P, Gargadennec A, Valette G, Fruchier A, Andary C. Первичные флавоноиды в красителе календулы: экстракция, структура и участие в процессе окрашивания. Фитохим Анал. 2008; 19: 46–51. DOI: 10.1002 / pca.1014. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Braga PC, Dal Sasso M, Culici M, Spallino A, Falchi M, Bertelli A, Morelli R, Lo Scalzo R. Антиоксидантная активность экстракта Calendula officinalis : ингибирующие эффекты на хемилюминесценция вспышек нейтрофилов человека и спектроскопия электронного парамагнитного резонанса.Фармакология. 2009; 83: 348–55. DOI: 10,1159 / 000217583. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Мецзомо Н., Мартинес Дж., Феррейра С.С. Экономическая жизнеспособность SFE из персика, миндаля, мяты и календулы. J Food Eng. 2011; 103: 473–479. DOI: 10.1016 / j.jfoodeng.2010.10.032. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Хэдфилд Р.А., Влахович Т.К., Хан Т. Использование календулы для лечения кожных заболеваний в подиатрической области. Голеностопный сустав стопы J. 2008; 1: 1–8. DOI: 10.1186 / 1757-1146-1-1. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Мулей Б.П., Хадабади С.С., Банарас Н.Б.Фитохимические компоненты и фармакологическая активность Календула лекарственная Linn (Asteraceae) Tropical J Pharm Res. 2009. 8: 455–465. [Google Scholar]
  • Сильва Э. Дж. Р., Гонсалвес Э. С., Агиар Ф., Эвенсио Л. Б., Лира ММА, Коэльо MCOC, Фрага MCCA, Wanderley AG. Токсикологические исследования водно-спиртового экстракта Календулы лекарственной L. Фитотерапевтические исследования. 2007. 21: 332–336. DOI: 10.1002 / ptr.2009. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Naguib NY, Khalil MY, El Sherbeny SE.Сравнительное исследование продуктивности и химических составляющих различных источников и видов растений календулы , подвергшихся воздействию двух листовых удобрений. J Appl Sci Res. 2005; 1: 176–189. [Google Scholar]
  • Халид К.А., Тейшейра да Силва Дж.А. Урожайность, содержание эфирного масла и пигмента в цветочных головках Calendula officinalis L., культивируемых в условиях солевого стресса. Sci Hort. 2010; 126: 297–305. DOI: 10.1016 / j.scienta.2010.07.023. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Паолини Дж., Барбони Т., Дежобер Дж. М., Джабу Н., Музелли А., Коста Дж.Химический состав, внутривидовые и сезонные колебания эфирных масел Calendula arvensis L. Biochem Syst Ecol. 2010. 38: 865–874. DOI: 10.1016 / j.bse.2010.07.009. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Fronza M, Heinzmann B, Hamburger M, Laufer S, Merfort I. Определение раневого эффекта экстрактов календулы с использованием анализа царапин с фибробластами 3T3. J Ethnopharmacol. 2009; 126: 463–467. DOI: 10.1016 / j.jep.2009.09.014. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Безбрадица Д., Милич-Ашкрабич Дж., Петрович С.Д., Шилер-Маринкович С.Исследование влияния растворителя на кинетику разложения каротиноидов в масляных экстрактах C. officinalis . J Serb Chem Soc. 2005. 70: 115–124. DOI: 10.2298 / JSC0501115B. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Лу С., Ли Л. Метаболизм каротиноидов: биосинтез, регуляция и не только. J Integrative Plant Biol. 2008. 50: 778–785. DOI: 10.1111 / j.1744-7909.2008.00708.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Fonseca YM, Catini CD, Vicentini FTMC, Nomizo A, Gerlach RF, Fonseca MJV.Защитный эффект экстракта Calendula officinalis против окислительного стресса, вызванного ультрафиолетом B, в коже: оценка снижения уровня глутатиона и секреции матриксной металлопротеиназы. J Ethnopharmacol. 2010; 127: 596–601. DOI: 10.1016 / j.jep.2009.12.019. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Ириани Р., Мальдонаде Д., Родригес-Амайя Б., Адилма Р., Скампарини П. Каротиноиды дрожжей, выделенные из экосистемы Бразилии. Food Chem. 2008; 107: 145–150. DOI: 10.1016 / j.foodchem.2007.07.075.[CrossRef] [Google Scholar]
  • Раал А., Кирсипуу К. Общее содержание флавоноидов в сортах Calendula officinalis L., происходящих из разных стран и возделываемых в Эстонии. Nat Prod Res. 2011; 25: 658–62. DOI: 10.1080 / 14786419.2010.528417. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Прити К., Чандран Р.К. Влияние экстракта цветков Calendula officinalis на белки острой фазы, механизм антиоксидантной защиты и образование гранулем во время термических ожогов.J Clin Biochem Nutr. 2008; 43: 58–64. DOI: 10.3164 / jcbn.2008043. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Фариа Р.Л., Кардосо Л.М., Акисуэ Дж., Перейра, Калифорния, Джункейра Дж. С., Хорхе А.О., Сантос Жуниор П.В. Противомикробная активность Calendula officinalis, Camellia sinensis и хлоргексидина в отношении прикрепления микроорганизмов к швам после удаления непрорезавшихся третьих моляров. J Appl Oral Sci. 2011; 19: 476–82. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
  • Butnariu M, Palicica RD.Buletinul Oficial de Proprietate Industriala, Патентные заявки. Vol. 3. ОСИМ, РО122836-Б1; 2010. Аптечная мазь на основе цветков календулы, выращенных на обогащенных цинком почвах, и способ ее приготовления; С. 1–18. [Google Scholar]
  • Preethi KC, Siveen KS, Kuttan R, Kuttan G. Ингибирование метастазирования клеток меланомы B16F-10 у мышей C57BL / 6 с помощью экстракта цветков Calendula officinalis L. Азиатский Pac J Cancer Prev. 2010; 11: 1773–9. [PubMed] [Google Scholar]
  • Ло Дж., Чжан Л., Ван М., Хе С., Ян Ю.Определение кверцетина и кемпферола в растениях Dysosma методом RP-HPLC. Чжунго Чжун Яо За Чжи. 2010; 35: 3021–3023. [PubMed] [Google Scholar]
  • Даниэльски Л., Кампос LMAS, Брешиани Л.Ф.В., Хенсе Х., Юнес Р.А., Феррейра С.С. Олеорезин календулы ( Calendula officinalis L.): растворимость в SC-CO 2 и профиль состава. Chem Eng Proc. 2007. 46: 99–106. DOI: 10.1016 / j.cep.2006.05.004. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Раал А., Кирсипуу К., Муст Р., Тенно С. Содержание общих каротиноидов в Calendula officinalis L.из разных стран, выращиваемых в Эстонии. Nat Prod Commun. 2009; 4: 35–8. [PubMed] [Google Scholar]
  • Газим З., Резенде С., Фрага С., Диас Филхо Б., Накамура С., Кортез Д. Анализ эфирных масел из Календулы лекарственной , растущей в Бразилии, с использованием трех различных процедур экстракции. Brazil J Pharm Sci. 2008; 44: 391–395. [Google Scholar]
  • Сильва Э. Дж., Коста-Сильва Дж. Х., Эвенсио Л. Б., Фрага Мдо С., Коэльо М. С., Wanderley AG. Репродуктивная оценка водно-спиртового экстракта календулы лекарственной календулы лекарственной L.у крыс линии Вистар. Phytother Res. 2009; 23: 1392–8. DOI: 10.1002 / ptr.2785. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Лич MJ. C. officinalis и заживление ран: систематический обзор. Раны. 2008. 20: 236–243. [PubMed] [Google Scholar]
  • Око О.О., Садименко А.А., Афолаян А.Дж. Влияние возраста на урожайность и состав эфирных масел Calendula officinalis . J Appl Sci. 2007. 7: 3806–3810. [Google Scholar]
  • Лю Цзинь, Ян Х, Ван К., Куанг Т., Чжан Дж., Гуй Л., Ань Х, Чанг В.Кристаллическая структура основного светособирающего комплекса шпината при разрешении 2,72 Å. Природа. 2004. 428: 287–292. DOI: 10,1038 / природа02373. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Гуськов А., Керн Дж., Габдулхаков А., Брозер М., Зуни А., Сенгер В. Фотосистема II цианобактерий с разрешением 2,9 Å и роль хинонов, липидов, каналов и хлорида. Nat Struct Mol Biol. 2009. 16: 334–342. DOI: 10.1038 / nsmb.1559. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Баллоттария М., Жирардона Дж., Далл'Остоа Л., Басси Р.Эволюция и функциональные свойства светособирающих комплексов Photosystem II у эукариот. Biochim Biophys Acta Bioenerg. 2012; 1817: 143–157. DOI: 10.1016 / j.bbabio.2011.06.005. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Европейская фармакопея. PHARMEUROPA. 2011; 23 http: //www.edqm. eu / en / News-and-General-Information-43.html Дата обращения 2015/10/15. [Google Scholar]
  • Granger KL, Gallagher RS, Fuerst EP, Alldredge JR. Сравнение методов фенольной экстракции семян и методов анализа. Методы Ecol Evol.2011; 2: 691–698. DOI: 10.1111 / j.2041-210X.2011.00120.x. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Тутин Т.Г., Хейвуд В.Х., Берджес Н.А., Валентайн Д.Х., Уолтерс С.М., Уэбб Д.А., редактор. Набор в мягкой обложке. Vol. 5. 2010. Флора европейская; п. 135. [Google Scholar]
  • Ph. Eur. Справочные стандарты. http://www.edqm.eu/en/Ph-Eur-Reference-Standards-627.html Источник 2011/10/16.
  • ВОЗ. Международные химические эталонные вещества. (ICRS) 2010. http://www.edqm.eu/en/WHO-International-Chemical-Reference-Substances-ICRS-1393.html Проверено 18 октября 2011 г.
  • ISO-14502-1: 2005; и AOAC 941.15.AOAC, 2003

Обзор фитохимии и этнофармакологических аспектов рода Calendula

Резюме

Этот обзор включает 84 ссылки на род Calendula ( Asteraceae ) и включает этнофармакологию, морфологию и микроскопию , фармакологические отчеты, клинические исследования и токсикология выдающихся видов календулы .Тритерпеновые спирты, тритерпеновые сапонины, флавоноиды, каротиноиды и полисахариды составляют основные классы фитосоставляющих этого рода. Некоторые виды этого рода имеют лечебное значение, среди них Calendula officinalis Linn., Традиционно использовавшийся для лечения различных опухолей кожи, дерматологических поражений, язв, отеков и нервных расстройств, а также почти 200 косметических составов, т. Е. кремы, лосьоны, шампуни. Несмотря на давнюю традицию использования некоторых видов, этот род должным образом не изучен.В заключительной части подчеркивается будущий охват видов календулы с целью установления их разнообразной биологической активности и способов действия.

Ключевые слова: Календула , каротиноиды, флавоноиды, тритерпеновые спирты

ВВЕДЕНИЕ

В этом обзоре подчеркивается традиционное использование и клинический потенциал календулы видов. Обзор призван привлечь внимание исследователей натуральных продуктов во всем мире, чтобы сосредоточить внимание на неизведанном потенциале календулы .Этот род необходимо систематически исследовать, чтобы потенциальные виды можно было использовать в качестве терапевтических агентов.

Обзор был составлен с использованием ссылок из основных баз данных, таких как Chemical Abstracts, Medicinal and Aromatic Plant Abstracts, PubMed, King's American Dispensatory, Henriette's Herbal Homepage, Duke's Phytochemical and Ethnobotany. Доступная информация о календуле разделена на шесть разделов: этнофармакология, морфология и микроскопия, фитосоставы, фармакологические отчеты, клинические исследования и токсикология.

РОД CALENDULA

Род Calendula ( Asteraceae ) включает примерно 25 травянистых однолетних или многолетних видов, наиболее распространенными являются Calendula officinalis Linn., Calendula arvensis Linn., Calendula arvensis Linn., Calendula arvensis Linn. ., Calendula stellata Cav., Calendula alata Rech., Calendula tripterocarpa Rupr. [1] Род произрастает в странах Средиземноморья.[2]

Этнофармакология

Традиционное использование

C. alata Rech.f., надземные части используются для лечения камней в почках и желчном пузыре. [3]

C. arvensis Linn. (Бархатцы) использовались как дезинфицирующее, спазмолитическое и мочегонное средство. [4] В итальянской народной медицине растение используется как противовоспалительное, противоопухолевое и жаропонижающее средство [5]. В Испании листья считаются потогонными. Традиционно его используют как средство, вызывающее менструацию, потогонное и успокаивающее средство.[6] Известно, что он обладает ранозаживляющими свойствами, и измельченные листья применяют местно на раны. [7] Отвар цветочных головок использовался для лечения ожогов [8].

C. officinalis Linn. (Бархатцы) традиционно использовались для лечения воспалений внутренних органов, язв желудочно-кишечного тракта и дисменореи, а также как мочегонное и потогонное средство при судорогах. Он также используется при воспалениях слизистой оболочки полости рта и глотки, ран и ожогах. [9] Календула - это очищающее и детоксицирующее средство, а настой лечит хронические инфекции.[10] Высушенные цветочные головки используются из-за их жаропонижающего, противоопухолевого и рубцового действия. [11] Местное применение настоя цветов используется как противогрибковое и антисептическое средство при ранах, следах, веснушках, растяжении связок и конъюнктивите. [12] Чай с календулой используется для промывания глаз, полосканий, опрелостей и других воспалительных заболеваний кожи и слизистых оболочек. [13] Материнская настойка C. officinalis используется в гомеопатии для лечения психического напряжения и бессонницы.[14]

Лечебные свойства C. officinalis были упомянуты в аюрведической медицине и системе Unani, что указывает на то, что листья и цветы обладают жаропонижающим, противовоспалительным, противоэпилептическим и противомикробным действием. [15] В традиционной и гомеопатической медицине C. officinalis использовался при плохом зрении, нарушениях менструального цикла, варикозном расширении вен, геморрое и язве двенадцатиперстной кишки. [16] В средние века цветков календулы использовались для лечения непроходимости печени, укусов змей и для укрепления сердца.Он использовался в 18 веках как средство от головной боли, желтухи и красных глаз. Растение использовалось во время гражданской войны для лечения ран и как средство от кори, оспы и желтухи [17].

Отвар и настой Календулы персиковой C.A. Надземные части Mey используются для лечения камней в почках. [3]

Альтернативные и дополнительные лекарственные применения

Среди различных видов рода Calendula , C. officinalis является единственным, который широко используется в клинической практике во всем мире.Растение внесено в списки Немецкой комиссии E, Европейского научного кооператива по фитотерапии, Британской фармакопеи по травам, монографий Всемирной организации здравоохранения по заживлению ран и противовоспалительному действию [18]. Препараты C. officinalis используются в различных системах дополнительной и альтернативной медицины в основном при ожогах, порезах, сыпи, дерматите и варикозе [19]. Он также входит в состав лечения сухой кожи, укусов пчел и язв на ногах. [20] Эфирное масло растения успокаивает центральную нервную систему и лечит раны.[21]

Препараты C. officinalis , используемые в настоящее время, включают карофилленовую мазь (содержащую каротиноиды, извлеченные из цветов) и настойку календулы. Это один из компонентов патентованного гомеопатического препарата Траумель ® , который используется для лечения симптомов, связанных с острыми скелетно-мышечными повреждениями, включая боль и отек. [22] Отикон отический раствор и раствор ушных капель натуропатического экстракта трав, состав ушных капель натуропатического происхождения, содержащий цветков календулы , как сообщается, эффективны для лечения оталгии, связанной с острым средним отитом у детей.[23,24]

Морфология и микроскопия

C. arvensis Linn. - однолетнее растение, обычно не превышающее 15 см в высоту. Листья копьевидные; стебель тонкий, опушенный; соцветие. Одиночная цветочная головка шириной до 4 см с ярко-желтыми или желто-оранжевыми лучевыми соцветиями вокруг центра желтых цветков диска. [25,26]

C. officinalis Linn. [] - однолетнее или двухлетнее растение, достигающее 30-60 см в высоту. Листья нижние лопатообразные, длиной 10-20 см и шириной 1-4 см; верхняя продолговатая и мукронная, длиной 4-7 см; стебель угловатый, опушенный, твердый; цветочные головки от ярко-желтого до оранжевого цвета; краевые цветки у культурных растений многорядные, венчик продолговато-лопатчатый, длиной 15-25 мм и шириной 3 мм; венчик дисковых цветков округлый, на вершине трезубец, 1.5-2,5 см длиной и 4-7 мм в диаметре с трубчатыми соцветиями длиной 5 мм. [27,28]

Порошок C. officinalis желтовато-коричневый с характерным ароматным запахом и слегка горьковатым вкусом; состоит из фрагментов венчика, аномоцитарных устьиц в апикальной области наружного эпидермиса, покрывающих и железистых трихом, удлиненных склеренхиматозных клеток, пыльцевых зерен, фрагментов стенок яичников, содержащих коричневый пигмент, фрагментов рыльца, фрагментов фиброзного слоя другие.[29,30]

C. stellata Cav. - это небольшое привлекательное однолетнее растение высотой 30 см и более. Листья овальные или продолговатые, несколько заостренные, волнисто-зубчатые; [31] стебли шероховатые; наружные пять семянок с перепончатыми зубчатыми краями, пять внутренних - «лодочки» и гладкие на спине, остальные угловатые и с размытыми краями на спине. [32]

C. suffruticosa Vahl. - многолетнее растение, достигающее в высоту от 20 см до 40 см. Листья копьевидные, слегка зубчатые, в коротких липких волосках; стебель молодой сначала возводится, позже начинает свисать и стелется в почву; цветки ярко-желтые, размером примерно 2 штуки каждое.5 см в диаметре. [31,33]

Фитосоставляющие

Четыре вида календулы были изучены фитохимически. Обобщены фитоэлементы различных видов календулы . представляет химические структуры некоторых фитосоставов, представленных из рода Calendula .

Таблица 1

Фитокомпоненты различных видов Календула

Химическая структура некоторых фитосоставов, представленных из рода Календула

Фармакологические отчеты

Имеющаяся литература показывает, что из 12-20 видов календулы только три вида, i.е., C. officinalis , C. arvensis и C. suffruticosa были оценены на предмет их фармакологической активности.

Настойка C. arvensis была активна против Staphylococcus aureus в концентрациях 10 или 25 мг / мл. [56] Сесквитерпеновые гликозиды из C. arvensis были способны подавлять инфицирование вирусом везикулярного стоматита [57]. Фракция, содержащая сапонин из надземных частей C. arvensis , обладала гемолитической активностью in vitro и противовоспалительной активностью против индуцированного каррагенаном отека лапы у крыс.[58] Сапонины показали антимутагенную активность в отношении бензо (а) пирена 1 мкг и мутагенного концентрата мочи курильщика (SU) 5 мкл с зависимостью от дозы. [59]

Препараты C. officinalis применяются в основном в виде настоев, настоев и мазей как ранозаживляющее средство при воспалениях кожи, слизистых оболочек, плохо заживающих ран, синяках, фурункулах и высыпаниях, например, фарингитах и ​​т. язвы на ногах. [27] В реакции смешанных лимфоцитов 70% этанольный экстракт показал стимулирующее действие при 0.1-10 мкг / мл с последующим ингибированием при более высоких концентрациях. [60] Фагоцитоз человеческих гранулоцитов стимулировался полисахаридами, выделенными из водного экстракта цветков календулы [61]. Экстракты цветков календулы разной полярности проявляли антиоксидантное действие на перекисное окисление липосомных липидов, вызванное Fe 2 + и аскорбиновой кислотой. [62,63] Изорамнетин 3-гликозиды из цветков календулы ингибировали липоксигеназу из цитозоля легких крысы при концентрация 1.5 × 10 -5 M. [64] В тестовой системе, основанной на щечных мембранах свиней, сильные зависящие от концентрации адгезивные процессы наблюдались с обогащенным полисахаридом экстрактом с низкой вязкостью (98% углеводов) цветков календулы . Эти данные свидетельствуют о том, что полисахариды могут способствовать терапевтическому эффекту при лечении раздраженной слизистой оболочки. [65] Обогащенная тритерпеном фракция, вводимая перорально мышам, инокулированным карциномой мыши Эрлиха, предотвращала развитие асцита и увеличивала время выживания по сравнению с контролем.[66] Тритерпены, такие как фарадиол и тараксастерол, ингибируют экспериментальное продвижение опухоли и поэтому считаются ингибиторами роста опухоли. [67] Фракция, богатая сапонином, вводимая перорально в дозе 50 мг / кг веса тела крысам с гиперлипемией, снижала уровень липидов в сыворотке. [68,69] Водно-спиртовой экстракт C. officinalis продемонстрировал ингибирующее действие на центральную нервную систему с заметной общей седативной активностью. как гипотензивный эффект. [70] Спиртовой экстракт цветков С.лекарственный обладает анти-ВИЧ свойствами. [71] Крем, содержащий экстракт календулы , эффективен при декстрановых и ожоговых отеках, а также при острой лимфедеме у крыс. Активность против лимфедемы в первую очередь приписывалась усилению протеолитической активности макрофагов. [72] Эфирное масло цветов подавляло рост in vitro Bacillus subtilis , Escherichia coli , S. aureus , Pseudomonas aeruginosa и Candida albicans .[73] Ацетон, этанол или водные экстракты подавляли рост in vitro гриба Neurospora crass. [74] Флавоноидная фракция, выделенная из цветков, подавляла рост in vitro S. aureus , Sarcina lutea , E. coli , Klebsiella pneumonia и Candida monosa . [75] 50% этанольный экстракт. растения показали спермицидную активность у крыс при концентрации 2%. [76]

C. suffruticosa подавляла патогенные микроорганизмы, особенно Pseudomonas syringae , Pseudomonas fluorescens , Xanthomonas campestris , Agrobacterium tumefaciens .[77]

Клинические исследования

В рандомизированном открытом контролируемом исследовании сравнивали эффекты трех мазей после местного лечения пациентов с ожогами 2 или 3 степени в течение 17 дней: Мазь с цветком календулы (приготовленные перевариванием в вазелине) ( n = 53) или только вазелин ( n = 50) или протеолитическая мазь ( n = 53). Считалось, что частота успеха составляет 37/53 для мази с цветками календулы , , 27/50 для вазелина и 35/53 для протеолитической мази.[78] В открытом неконтролируемом пилотном исследовании 30 пациентов с ожогами или ожогами лечили 3 раза в день в течение до 14 дней гидрогелем, содержащим 10% гидроэтанольного экстракта. Симптомы покраснения, отека, пузырей, боли, болезненности и чувствительности к теплу оценивались до, во время и в конце лечения. Общий балл и индивидуальные баллы по каждому симптому улучшились. [79] У женщин с хирургическими ранами местное применение смеси, содержащей 70% масляный экстракт зверобоя Hypericum perforatum и 30% масляный экстракт C.arvensis улучшил скорость заживления по сравнению с контролем. [53] Было проведено рандомизированное единичное слепое исследование фазы III C. officinalis по сравнению с троламином для профилактики острого дерматита во время облучения по поводу рака груди. Пациенты, оперированные по поводу рака груди и получавшие послеоперационную лучевую терапию, были случайным образом распределены для применения либо мази Calendula , содержащей 20% свежих надземных частей календулы в вазелине (126 пациентов), либо троламина ( 128 пациентов) на облученных полях после каждого сеанса.Первичной конечной точкой было возникновение острого дерматита 2 степени или выше. Вторичными конечными точками были возникновение боли, количество использованного местного средства и удовлетворенность пациента. Частота возникновения острого дерматита 2 степени и выше была значительно ниже (41% против 63%; P <0,001) при использовании Calendula , чем при использовании троламина. Более того, пациенты, получавшие календулу , реже прерывали лучевую терапию и значительно снижали вызванную облучением боль.[80] Клиническое исследование мази с экстрактом C. officinalis было проведено у 34 пациентов с венозной язвой ног. В общей сложности 21 пациент с 33 венозными язвами лечился мазью, наносимой дважды в день в течение 3 недель. Контрольную группу, состоящую из 13 пациентов с 22 венозными язвами, лечили повязками с физиологическим раствором, наложенными на язвы в течение 3 недель. В опытной группе общая поверхность всех язв на момент начала терапии составила 67 544 мм 2 .После 3 недели общая поверхность всех язв составила 39 373 мм 2 (уменьшение на 41,71%). У семи пациентов была достигнута полная эпителизация. В контрольной группе общая поверхность всех язв на момент начала терапии составила 69 722 мм 2 . После 3 недели общая поверхность всех язв составила 58 743 мм 2 (уменьшение на 14,52%). У четырех пациентов была достигнута полная эпителизация. Отмечено статистически значимое ускорение заживления ран в опытной группе ( P, <0.05), что свидетельствует о положительном влиянии мази с экстрактом календулы на эпителизацию венозных язв [81].

Токсикология

Контакт с кожей препаратов Calendula , хотя и бывает редко, может вызвать аллергическую реакцию на это растение. Сообщалось о сенсибилизации к календуле и аллергических контактных реакциях. [82,83] Также были случаи анафилактического шока после полоскания горла настоем календулы . [84]

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Около 12-20 видов растений род Calendula был обнаружен в различных флорах.Среди них большинство этнофармакологических отчетов доступно по C. officinalis и C. arvensis . Кроме того, только четыре вида календулы были частично исследованы на предмет их фитосостава. Тщательное изучение литературы о календуле показывает, что три вида были исследованы фармакологически. Фармакологические исследования показывают, что C. officinalis проявляет антибактериальные, противовирусные, противовоспалительные, противоопухолевые и антиоксидантные свойства; С.arvensis обладает антибактериальным, противовоспалительным, антимутагенным и гемолитическим действием; и C. Suffruticosa проявляет антимикробную активность. C. officinalis включен в ряд лекарственных препаратов, которые используются в клинической практике для лечения различных заболеваний, например, заболеваний центральной нервной системы. Принимая во внимание этнофармакологические, фитохимические и фармакологические отчеты, низкую токсичность и частоту использования, C. officinalis , по-видимому, обладает большим потенциалом для углубленного изучения различных видов биологической активности.Немногочисленные предварительные фармакологические отчеты подтверждают лекарственный потенциал примерно видов календулы . Эти виды необходимо систематически исследовать с целью установления их разнообразной фармакологической активности и способов действия.

Химический состав и биологическая активность эфирных масел из цветков и листьев календулы лекарственной, журнал Flavor and Fragrance Journal

Химический состав и биологическая активность эфирных масел Calendula officinalis L.цветы и листья
Журнал ароматов и ароматов ( ЕСЛИ 2.576 ) Pub Дата: 2021-04-30 , DOI: 10.1002 / ffj.3661 Гунес Ак, Гохан Зенгин, Рамазан Джейлан, Мохамад Фавзи Махомудалли, Шармин Джугрит, Адриано Моллика, Аззурра Стефануччи

Календула лекарственная L., широко известное как календула, является популярным декоративным и высоко лекарственным растением. Фактически, он широко известен своими широкими терапевтическими эффектами, способствующими заживлению ран и лечению различных заболеваний. В этом исследовании эфирные масла из цветов и листьев C. officinalis были проанализированы на их химические составляющие и проверены на их антиоксидантные и ферментативные свойства in vitro. Тридцать общих соединений были обнаружены в обоих эфирных маслах, причем наиболее распространенным соединением был сесквитерпеновый спирт, α-кадинол (лист: 32.3% и цветок: 31,3% соответственно). Кроме того, было обнаружено, что эфирные масла обладают антиоксидантной способностью за счет улавливания свободных радикалов и механизмов восстановления (DPPH: 2,94, 1,52 мг эквивалента тролокса (TE) / г масла; ABTS: 20,72, 2,86 мг TE / г; CUPRAC: 31,16, 47,98 мг TE / г; FRAP: 24,84, 23,42 мг TE / г; фосфомолибден: 4,01, 4,68 ммоль TE / г для эфирных масел листьев и цветов соответственно). Более того, было обнаружено, что эфирные масла (листья и цветы соответственно) ингибируют все протестированные ферменты, а именно амилазу (0.46, 0,42 ммоль эквивалента акарбозы (ACAE) / г), глюкозидаза (1,35, 1,31 ммоль ACAE / г), ацетилхолинэстераза (2,48, 2,36 мг галантамина (GALAE) / г) и бутирилхолинэстераза (8,13, 8,20 мг GALAE / г) и тирозиназа. (47,73, 54,36 мг эквивалента койевой кислоты / г). Также был проведен молекулярный докинг, в результате которого были выявлены соединения неофитадиен и α-гумулен, демонстрирующие наивысшее сродство связывания с тирозиназой. Таким образом, полученные результаты продемонстрировали некоторую привлекательную активность эфирных масел C officinalis в качестве природных фармакологических агентов, которые могут быть ценными для потенциальной разработки фитопрепаратов против целевых заболеваний, и особенно для космецевтических применений.

更新 日期 : 2021-04-30

Химический состав и антимикробное действие календулы лекарственной, выращенной в химических и биологических условиях на метициллин-резистентном Staphylococcusaureus, изолированном от госпитальных инфекций

Chaleshtori S.H, Kachoie M. A. Химический состав и антимикробное действие календулы лекарственной, выращенной в химических и биологических условиях, на устойчивый к метициллину Staphylococcusaureus, выделенный из госпитальных инфекций. Биотех Рес Азия 2016; 13 (3).

Кафедра фитотерапии, Колледж пищевых продуктов и лекарств, филиал Шахрекорд, Исламский университет Азад, Шареакорд, Иран.

РЕФЕРАТ: Реферат Применение различных видов удобрений может влиять на биологическую активность Calendula officinalis .Настоящее исследование было направлено на изучение химических компонентов и антимикробных эффектов C. officinalis , выращенных в химических и биологических условиях на устойчивых к метициллину Staphylococcus aureus . Было собрано и культивировано четыреста образцов госпитальных инфекций. Штаммы MRSA подвергали дисковой диффузии и GC-Mass. Сто из 400 образцов госпитальных инфекций оказались положительными на MRSA (25%). Все изоляты также были положительными по гену mecA C. officinalis было обнаружено 40 различных химических компонентов. Наиболее изменчивые компоненты были обнаружены в контрольной группе (1,8-цинеол (30,456%), γ-терпинен (25,547%), терпинолен (4,584%), α-терпинеол (4,490%) и транс-β-оцинен (4,153%). %)). Применение биологических и химических удобрений привело к значительному увеличению уровней некоторых химических компонентов ( P <0,05). Штаммы MRSA обладают наивысшей устойчивостью к тетрациклину (95%), ампициллину (92%), пенициллину (90%). , гентамицин (88%) и ципрофлоксацин (77%).Контрольная группа имела самые высокие противомикробные эффекты, но эфирное масло C. officinalis , обогащенное обоими удобрениями, было эффективным в отношении устойчивого MRSA. Использование роста C. officinalis совместно с химическими и биологическими удобрениями было рекомендовано в качестве основного подхода к синтезу эффективных антибиотиков.

КЛЮЧЕВЫЕ СЛОВА: Календула лекарственная; Химические компоненты; Противомикробное действие; Устойчивый к метициллину Staphylococcus aureus; Биологическое удобрение; Химические удобрения

Введение

Золотистый стафилококк ( S.aureus ) - грамположительная кокковая бактерия и один из важнейших возбудителей различных типов госпитальных инфекций, включая системные инфекции (такие как инфекции мочевыводящих путей, дыхательных путей и крови, пневмония, синусит и пищевое отравление), а также кожные и инфекции мягких тканей (такие как раны, абсцесс, ожоги, фурункулез и импетиго) [1-3]. За последние 20 лет увеличилось количество как внебольничных, так и внутрибольничных инфекций, вызванных Staphylococcus aureus ( S. aureus ), и рост заболеваемости сопровождался увеличением числа устойчивых к антибиотикам штаммов, в частности метициллина. -устойчивый S aureus (MRSA) [4, 5].Штаммы MRSA имеют глобальное значение в связи с высокой распространенностью инфекций у пациентов, госпитализированных в больницы [4, 5]. Ген устойчивости к метициллину, mecA , находится на элементе размером от 21 до 67 т.п.н., который активно присутствует во всех инфекционных штаммах бактерий [6]. MRSA-штаммы клинических инфекций обладают высокой устойчивостью к широкому спектру антибиотиков, включая бета-лактамные антибиотики, в том числе пенициллины (метициллин, диклоксациллин, нафциллин, оксациллин и т. Д.)) и цефалоспорины и другие типы противомикробных агентов, включая эритромицин, котримоксазол, тетрациклин, пенициллин, гентамицин, цефексим и клиндамицин [7-10]. В связи с высокой распространенностью резистентности MRSA к широко используемым антибиотикам в больницах, необходимость применения и назначения новых противомикробных препаратов является существенной.

В последние годы большое внимание уделяется назначению лекарственных растений для лечения различных инфекционных заболеваний [11].Лекарственные растения - подходящие источники противомикробных агентов. Календула лекарственная ( C. officinalis ) - одно из наиболее часто используемых лекарственных растений среди иранцев, которое произрастает в регионах Средиземноморья [12]. C. officinalis , широко известный как календула, является однолетним травянистым растением и принадлежит к семейству сложноцветных. Цветки однодомны (отдельные цветки могут быть мужскими или женскими, но оба пола могут быть найдены на одном и том же растении) и опыляются пчелами.Он известен привлечением дикой природы. C. officinalis может широко применяться в качестве антисептического, противовоспалительного и рубцового, а также легкого антибактериального и противовирусного средства [11, 13-15]. Растение содержит эсквитерпеновые гликозиды, сапонины, ксантофиллы, триолтритерпены, флавоноиды, летучие вещества, δ-кадинен, α-кадинол, 1,3,5-кадинатриен и α-мууролол, которые обладают антиоксидантным и антимикробным действием [11, 13-16].

По высокой полезности посадки C.officinalis , фермеры перешли от использования различных видов сельскохозяйственных удобрений к повышению качества и количества, борьбе с вредителями и ускорению сбора урожая растений. Применение этих сельскохозяйственных удобрений и особенно биологических и химических (мочевина) удобрений может повлиять на химический состав, а также на терапевтическую активность эфирного масла, экстрагированного из C. officinalis . В некоторых случаях произошли значительные изменения в составе и эффективности лекарственных растений [17, 18].

В соответствии с высокой распространенностью штаммов MRSA в иранских случаях госпитальных инфекций, экономической, косметической и фармацевтической ценностью C. officinalis и отсутствием опубликованных данных о влиянии химических и биологических удобрений на компоненты и антимикробную активность C. officinalis , настоящее исследование было проведено для оценки химических компонентов и противомикробных эффектов различных препаратов C. officinalis на штаммы MRSA, выделенные от различных типов госпитальных инфекций в Иране.

Материалы и методы

Этические вопросы

Настоящее исследование было одобрено этическими комитетами Университета медицинских наук Бакияталлаха и больницы Хаджар, Иран. Письменное информированное согласие было получено от всех пациентов или их родителей. Письменное согласие было также подписано исследовательским отделом Исламского университета Азад в Шахрекорд (IAUSHK 110224) и этическими комитетами образовательных больниц, Тегеран, Иран.

Сбор проб и идентификация MRSA

С марта по октябрь 2015 года у госпитализированных пациентов иранских больниц было собрано в общей сложности 500 клинических образцов различных типов инфекций, которые были немедленно переведены в лабораторию в холодильнике со льдом.

Двадцать пять микролитров каждого образца высевали в бульон Мюллера-Хинтона (MHB, Merck, Германия) с добавлением 6,5% NaCl и гомогенизировали. Суспензию инкубировали 16–20 ч при 37 ° C.Один миллилитр обогащенной среды MHB добавляли к 9 мл бульона фенолового красного маннита, содержащего цефтизоксим (5 мкг / мл) и азтреонам (75 мкг / мл) (PHMB), и инкубировали в течение 16–20 часов при 37 ° C. Поверхность среды для селективного выделения MRSA ID инокулировали стерильной петлей. Чашки инкубировали в течение 24 часов при 37 ° C (когда колонии было трудно идентифицировать, инкубация затягивалась еще на 24 часа). Типичные зеленые колонии были известны как MRSA. Пять выбранных типичных колоний на чашку субкультивировали на триптон-соевом агаре (TSA, Merck, Германия).Типичные колонии тестировали с помощью теста Staphytect Plus (Oxoid), теста латексной агглютинации для обнаружения фактора слипания, белка А и некоторых полисахаридов, обнаруженных в MRSA.

ПЦР-подтверждение MRSA

Все штаммы MRSA культивировали на триптиказо-соевом бульоне (TSB) и инкубировали при 37 ° C в течение 18-24 часов. Геномную ДНК экстрагировали из бактериальных колоний с помощью набора для выделения и очистки ДНК (Cinagen, Иран) согласно инструкции производителя.Наличие штаммов MRSA подтверждено с помощью амплификации гена mecA на основе ПЦР [19]. Реакцию проводили в конечном объеме 50 мкл, содержащем 5 мкл 10 × буфера + MgCl 2 , 2 мМ dNTP, 2 единицы ДНК-полимеразы Taq, 100 нг геномной ДНК в качестве матрицы и 25 пикомолей каждого праймера (5'- AAATCAGATGGTAAAGGTTGGC-3 'и 5'-AGTTCTGCAGTACCGGATTTGC-3') (533 п.н.). ПЦР выполняли с использованием термоциклера (Eppendorf Mastercycler 5330, Eppendorf-Nethel-Hinz GmbH, Гамбург, Германия) при следующих условиях: начальная денатурация в течение 1 минуты при 94 ° C и 40 циклов, включая 95 ° C в течение 30 с, 55 ° C в течение 30 с и 72 ° C в течение 1 минуты, и окончательное удлинение при 72 ° C в течение 5 минут. S. aureus ATCC 6538 использовали в качестве положительного контроля, а дистиллированную воду использовали в качестве отрицательного контроля. Пятнадцать микролитров продуктов ПЦР во всех реакциях разделяли на 1,5% агарозном геле, содержащем 0,5 мг / мл SYBR Green в буфере трис-борат-ЭДТА, при 90 В в течение 1 ч, также с использованием подходящих маркеров молекулярной массы. Продукты исследовали в ультрафиолетовом свете.

Лечение календулы лекарственной

На ферме производили различные обработки C. officinalis .После посадки растений в тех же условиях, восстание началось с различных обработок. Первая обработка C. officinalis была обработана химическим удобрением, содержащим мочевину. Вторая обработка проводилась с использованием биологических удобрений. Третья обработка была обработана как мочевиной, так и биологическими удобрениями. Контрольная группа росла в обычных условиях без каких-либо удобрений. Все остальные условия, включая процесс полива, освещение, тип почвы, температуру и влажность, были одинаковыми между обработками.После выращивания цветков C. officinalis были собраны и немедленно переданы в Центр медицинских и ароматических исследований Исламского университета Азад в Шахрекорд.

Экстракция эфирного масла

Пятьсот граммов свежих цветов каждой обработки подвергали гидродистилляции отдельно в течение 3 ч в цельностеклянном аппарате Клевенджера в соответствии с методом Британской фармакопеи [20].

ГХ-масс-анализ

Для изучения химического состава 4 различных обработок C.officinalis был использован метод ГХ-масс-анализа с использованием газового хроматографа Agilent 6890 Series II (Пало-Альто, США), соединенного с квадрупольным масс-спектрометром Agilent 5973 с режимом электронной ионизации (EI), генерируемым при 70 эВ (источник ионов при 230 ° C и линии передачи при 280 ° C). ГХ выполняли с использованием капиллярной колонки J&W DB-5 (5% дифенил- 95% диметилсиликон) (30 м x 0,25 мм внутренний диаметр x 0,25 мкм пленка), в качестве газа-носителя использовали гелий (1 мл / мин). Начальная температура была запрограммирована от 35 ° C до 60 ° C (при 1 ° C мин-1), до 170 ° C (3 ° C мин-1), до 200 ° C (8 ° C мин-1) и до 280 ° C (15 ° C мин-1) и выдерживают при 280 ° C в течение 5 мин.Порт инжектора (режим без деления потока, 0,5 мин) имел температуру 250 ° C. Индексы удерживания рассчитывались относительно наканов. Все соединения были идентифицированы путем сравнения масс-спектров (библиотека Wiley 275) и данных индекса удерживания, найденных в литературе [21].

Противомикробные эффекты различных средств лечения Календулы лекарственной

Дисковый диффузионный метод агара был использован для скрининга антибактериальной активности C. officinalisflowers [14]. Изоляты MRSA госпитальных инфекций человека переносили на среду Nutrient Agar (NA, Merck, Германия).Бумажные диски отдельно пропитывали 25 мкл эфирного масла с концентрацией 0,5 мг / мл и помещали на чашки с засеянным агаром. Все планшеты оставляли при комнатной температуре на 30 минут для диффузии эфирного масла, затем инкубировали при 37 ° C в течение 24 часов. Чувствительность изолятов MRSA к эфирному маслу C. officinalisflowers также сравнивали с имеющимися в продаже антимикробными дисками. Чувствительность изолятов MRSA тестировали против ампициллина (10 мкг / диск), гентамицина (10 мкг / диск), пенициллина (10 мкг / диск), котримоксазола (30 мкг / диск), линкомицина (2 мкг / диск), ципрофлоксацина (5 мкг / диск), клиндамицин (2 мкг / диск), имипенем (30 мкг / диск), тетрациклин (30 мкг / диск), цефексим (5 мкг / диск) и азитромицин (15 мкг / диск) антибиотики (Oxoid, Великобритания ).Диаметр зоны ингибирования, создаваемой эфирным маслом, а также каждым диском с антибиотиками, измеряли и интерпретировали на основе протокола Института клинических и лабораторных стандартов (CLSI) [22]. S. aureus ATCC 25923 использовали в качестве микроорганизма для контроля качества при определении чувствительности к противомикробным препаратам.

Статистический анализ

Противомикробные эффекты C. officinalisflowers и каждого противомикробного агента были протестированы 3 раза. Результаты были перенесены в электронную таблицу Microsoft Excel (Microsoft Corp., Редмонд, Вашингтон) для анализа. Статистический анализ был выполнен с использованием программного обеспечения SPSS / 19.0 (SPSS Inc., Чикаго, Иллинойс) для выявления значительной взаимосвязи между чувствительностью к антибиотикам штаммов MRSA при госпитальных инфекциях. В этом исследовании были выполнены критерий хи-квадрат и точный двусторонний критерий Фишера. Статистическая значимость оценивалась при значении P <0,05.

Результаты и обсуждение

Из 400 образцов госпитальных инфекций, собранных из образцов различных типов госпитальных инфекций в медицинских центрах и больницах Ирана, 100 образцов (25%) были положительными на присутствие MRSA.Присутствие гена mecA было идентифицировано во всех изолятах MRSA госпитальных инфекций с использованием метода ПЦР. На рисунке 1 показаны результаты гель-электрофореза для амплификации гена mecA .

Рис. 1. Гель-электрофорез продуктов ПЦР для гена mecA штаммов MRSA, выделенных от различных типов госпитальных инфекций. M: лестница из 100 п.н., 2: положительный образец для гена mecA (533 п.н.), 2: положительный контроль и 3: отрицательный контроль.

Нажмите здесь, чтобы посмотреть рисунок

Частота химических компонентов при различных обработках эфирного масла C. officinalis приведена в таблице 1. Всего в эфирном масле цветков C. officinalis было обнаружено 40 различных химических компонентов. Контрольная группа C. officinalis содержала наиболее изменчивые химические компоненты: всего 1,8-цинеол (30,456%), γ-терпинен (25,547%), терпинолен (4,584%), α-терпинеол (4.490%) и транс-β-оцинен (4,153%) были наиболее часто обнаруживаемыми компонентами в контрольной группе. Повышение уровня 1,8-цинеола, транс-β-оцинена, α-копаена, α-бурбонена, α-терпинилацетата, β-бисаболена, спатуленола, α-кадинола, γ-кадинена, α-кадинена и α-бисаболола. в группе C. officinalis , обработанной навозом мочевины, 1,8-цинеолом, транс-β-оциненом, α-копаеном, α-терпинилацетатом, α-мууролином, спатуленолом, γ-кадиненом, α-кадиненом и T- мууролол в группе, получавшей биологический навоз и, наконец, 1,8-цинеол, транс-β-оцинен, α-копаен, α-терпинилацетат, β-бисаболен, спатуленол, β-эудесмол, α-кадинол, γ-кадинен, α -кадинен и α-бисаболол в группе, получавшей как мочевину, так и биологические удобрения, были значительными ( P <0.05).

Таблица 1: Частота химического состава различных обработок эссенции Calendula officinalis .

Номер Химические компоненты Распределение в различных обработках (%)
Контроль * Лечение 1 Лечение 2 Лечение 3
1 α-Тужен 0.459
2 α-Пинен 3,032 0,553
3 Камфен 0,256
4 Сабинен 0,293
5 П-Пинен 0.490 0,784
6 1-Октен-3-ол 0,291
7 1,8-цинеол 30,456 53,755 43,512 50,431
8 п-цимен 2.495
9 α-терпинен 0.283
10 β-кариофиллен 1,289
11 Транс-β-оцинен 4,153 7,61 11,562 15,834
12 Бензолацетальдегид 1,354
13 γ-терпинен 25.547
14 цис-сабинен гидрат 2,928 3,319 2,319 1,863
15 Терпинолен 4,584 1,044 0,954 0,753
16 α-фелландрен 0,390
17 α-терпинеол 0.676 0,403 1,345 0,945
18 Карвакрол 3,146 1,343 1,060 0,877
19 Терпинен-4-ол 0,369
20 α-терпинеол 4,490 1.493 1,263 0.967
21 н-додекан 0,279
22 Карвакрол метиловый эфир 0,301 0,412 0,287
23 α-копаен 0,318 3,425 5,759 6,996
24 α-бурбонен 0.510 1,598 1,645 2,035
25 α-терпинилацетат 0,520 1,899 2,321 3,413
26 Эвгенол 0,676 0,392 0,216 0,02
27 н-тетрадекан 3,146 1,343 1,060 0.895
28 ) E- (Кариофиллен 0,369
29 α-мууролен 2,805 2,327 4,359 3,125
30 β-бисаболен 0,622 2,880 2,985 5,612
31 ) E- (γ-бисаболен 0.301 0,412 1,534
32 Спатуленол 0,318 1,529 5,579 4.525
33 β-Евдесмол 0,510 1,598 1,765 3,456
34 α-Кадинол 0,520 1,899 2,078 2.684
35 γ-Кадинен 3,319 5,652 12,345 15,675
36 Кадина 1,4-диен 0,950 1,044 1.887 1,345
37 α-кадинен 1,434 3,714 7,342 9,823
38 α-бисаболол 0.024 0,452 0,793 1,372
39 α-кадинол 0,616 0,845 2,564 1,231
40 Т-мууролол 0,324 1,178 2,422 4.102

В таблице 2 представлена ​​картина чувствительности к антибиотикам штаммов MRSA, выделенных при госпитальных инфекциях, против различных видов лечения C.officinalis эфирное масло. Мы обнаружили, что контрольная группа имела самые высокие антимикробные эффекты на штаммы MRSA клинических образцов человека, за которыми следовали препараты № 3 и 2. Лечение № 1 имело наименьшие антимикробные эффекты. С другой стороны, распространенность восприимчивости к MRSA по сравнению с контрольной группой, обработками № 3, 2 и 1 составляла 45%, 30%, 24% и 18% соответственно ( P <0,05). Штаммы MRSA обладали наивысшими уровнями устойчивости к лечению № 1 (41%), за которым следовали препараты № 2 (40%) и 1 (36%).Статистически значимая разница наблюдалась между типами C. officinalis и распространенностью устойчивости ( P <0,05).

Таблица 2: Профиль чувствительности к антибиотикам штаммов MRSA, выделенных при госпитальных инфекциях, против различных обработок экстрактами метанола Calendula officinalis .

Учебные комиссии Характер чувствительности 100 выделенных штаммов MRSA (%)
Восприимчивый Промежуточный Устойчивый
Контроль 45 (45) 30 (30) 25 (25)
Лечение 1 18 (18) 41 (41) 41 (41)
Лечение 2 24 (24) 36 (36) 40 (40)
Лечение 3 30 (30) 34 (34) 36 (36)

В таблице 3 показана чувствительность к антибиотикам штаммов MRSA, выделенных при госпитальных инфекциях, против обычно используемых антибиотиков.Мы обнаружили, что штаммы MRSA обладают наивысшими уровнями устойчивости к тетрациклину (95%), ампициллину (92%), пенициллину (90%), гентамицину (88%) и ципрофлоксацину (77%). Штаммы MRSA обладают самой высокой чувствительностью к имипенему (95%), азитромицину (76%), котримоксазолу (66%), клиндамицину (65%) и линкомицину (59%). Также наблюдалась значительная разница между типами диска с антибиотиками и структурой устойчивости к антибиотикам ( P <0,05). Чувствительность к антибиотикам препарата № 3 из C.officinalis был полностью выше, чем у тетрациклина, ампициллина, пенициллина, гентамицина, цефексима и ципрофлоксацина ( P <0,05).

Таблица 3: Профиль чувствительности к антибиотикам штаммов MRSA, выделенных при госпитальных инфекциях, против обычно используемых антибиотиков.

Антибиотики Характер чувствительности 100 выделенных штаммов MRSA (%)
Восприимчивый Промежуточный Устойчивый
Ампициллин 3 (3) 5 (5) 92 (92)
Гентамицин 3 (3) 9 (9) 88 (88)
Пенициллин 4 (4) 6 (6) 90 (90)
Котримоксазол 66 (66) 22 (22) 12 (12)
Линкомицин 59 (59) 26 (26) 15 (15)
Ципрофлоксацин 10 (10) 13 (13) 77 (77)
Клиндамицин 65 (65) 23 (23) 12 (12)
Имипенем 95 (95) 4 (4) 1 (1)
Тетрациклин 1 (1) 4 (4) 95 (95)
Цефексим 12 (12) 16 (16) 62 (62)
Азитромицин 76 (76) 14 (14) 10 (10)

Насколько нам известно, настоящее исследование является первым отчетом о распространенности химического состава и антимикробных эффектов различных обработок C.officinalis на штаммах MRSA, изолятах от различных типов госпитальных инфекций. Как уже говорилось, 25% проб были положительными на MRSA, что было существенно выше. Чрезвычайное, однобокое и неизбирательное назначение метициллина, а также других типов противомикробных средств является основными причинами высокой распространенности штаммов MRSA в образцах клинических инфекций. Загрязнение больничной среды и несоблюдение личной гигиены, особенно у пациентов, являющихся носителями штаммов MRSA, является еще одной причиной высокой распространенности MRSA.Другой причиной может быть недостаток подходящего дезинфицирующего средства.

штаммов MRSA из нашего исследования обладали высочайшим уровнем устойчивости к антибиотикам тетрациклина, ампициллина, пенициллина, гентамицина, цефексима и ципрофлоксацина, что было аналогично результатам различных ранее опубликованных статей [23-29]. Все эти исследования предложили синтез, состав и применение новых противомикробных агентов для преодоления возникновения высокой устойчивости к антибиотикам у штамма MRSA клинических образцов человека и даже животных.

Мы обнаружили, что обогащение сельскохозяйственных почв химическими и биологическими удобрениями может изменить химические компоненты эфирного масла, извлеченного из них. Однако разнообразие химических компонентов и даже процент некоторых из них в контрольной группе, которая росла в нормальных условиях, были выше, чем у химических, биологических и обеих групп, но уровни некоторых конкретных компонентов были увеличены. Итого 1,8-цинеол, β-бисаболен, транс-β-оцинен, α-копаен, спатуленол, α-бурбонен, α-терпинилацетат, T-мууролол, α-мууролен, α-кадинол, γ-кадинен, α -кадинен, β-эудесмол и α-бисабололхимические компоненты были увеличены в эфирных маслах групп лечения по сравнению с контролем.Однако противомикробные эффекты контрольной группы были выше, чем у других видов лечения, но мы обнаружили, что устойчивые к антибиотикам штаммы MRSA имели более высокую чувствительность к лечению № 3, чем контрольная группа ( P <0,05). При этом антимикробный эффект контрольной группы был выше, чем у препаратов № 2 и № 1 ( P <0,05). Похоже, что применение как биологических, так и химических удобрений может улучшить противомикробные эффекты C. officinalis против MRSA.

В исследовании, проведенном Davary Panah и Farahvash (2014) [30], влияние биологических и химических удобрений было значительным ( P <0,01 и P <0,05) на все параметры C. officinalis . (высота растения, диаметр стебля, эфирное масло, общий свежий вес и общий сухой вес). Y показал, что наибольшее количество эфирного масла было получено в группе, обогащенной нитроксиновыми удобрениями и удобрениями на основе мочевины, что было похоже на наши результаты.Rafiee et al. (2013) (31), Rahmani et al. (2009) (32), Bieski et al. (2013) (33), Jevdovic et al. (2013) (34) и Arab et al. (2015) (35) сообщили о схожих результатах. К сожалению, опубликованных данных о влиянии удобрений на химические компоненты эфирного масла C. officinalis нет.

В исследовании, проведенном Efstratiou et al. (2012) [14], результаты показали, что экстракты C. officinalis обладают исключительной антибактериальной активностью против Pseudomonas aeruginosa , Bacillus cereus , Escherichia coli , Staphylococcus aureus , Klebsiellaaerogenes , Enterocaliscalisoccus Клебсиеллапневмония .Chakraborthy (2008) [36] сообщил, что самые низкие значения минимальной ингибирующей концентрации (MIC) C. officinalis наблюдались для экстракта этанола, экстракта хлороформа, водного экстракта и экстракта петролейного эфира против бактерий. Они показали, что экстракты листьев C.officinalis были значительно эффективны против как грамположительных, так и грамотрицательных организмов. О подобных исследованиях высоких антимикробных эффектов препарата C. officinalis на патогенные бактерии сообщалось ранее Faria et al.(2011) [37] (Бразилия), Bissa and Bohra (2011) [38] (Индия) и Rigane et al. (2013) [39] (Тунис). Высокий антимикробный эффект препарата C. officinalis обусловлен его антимикробными химическими компонентами. Недавнее исследование показало, что тритерпеноид, такой как календулагликозид, тритерпеноидный сапонин, такой как фарадиол, асорамнетин3-O-неогесперидозид, кверцетин и изорамнетин, являются основными химическими компонентами C. officinalis , которые отвечают за антиоксидантные, противораковые, противомикробные, противомикробные и противовоспалительные свойства. ранозаживляющие эффекты [40].Фактически, внесение биологических и химических удобрений привело к увеличению уровней этих химических компонентов C. officinalis . Другие исследователи показали, что способ антимикробного действия C. officinalis может быть связан с его способностью инактивировать микробные ферменты, ингибировать ДНК-гиразу, подавлять функцию цитоплазматической мембраны [41, 42].

Результаты документированных отчетов показали, что основными соединениями календулы являются тритерпеноиды [43, 44], которые считаются наиболее важными противовоспалительными и противомикробными компонентами растения.Другие составляющие календулы, такие как сапонины, питательные микроэлементы, флавоноиды и полисахариды, также могут быть ответственны за противомикробный, противовоспалительный, антиоксидантный и ранозаживляющий эффект растения [43-45]. Антимикробная активность эфирного масла C. officinalis объясняется его основными химическими компонентами, включая цитраль (альдегид), гераниол (первичный спирт), эвгенол (фенол), ментол (вторичный спирт) и коричный альдегид (альдегид) [46] .Такие соединения, как линалоол, цитраль, гераниол или тимол, являются более антисептическими агентами в эфирном масле C. officinalis [47].

В заключение, результаты нашего исследования показали, что обогащение сельскохозяйственных земель биологическими и химическими удобрениями может улучшить лечебные и особенно противомикробные эффекты C. officinalis . Как было показано, MRSA имеет высокую распространенность, а также устойчивость к антибиотикам в Иране. Кроме того, обогащение C. officinalis как биологическими, так и химическими удобрениями оказало наибольшее влияние на антимикробную активность экстрагированного эфирного масла в отношении MRSA.Одновременное внесение обоих видов удобрений улучшило процентное содержание некоторых важных химических компонентов. Штаммы MRSA, которые имели высокий уровень устойчивости к ряду протестированных антибиотиков (тетрациклин, ампициллин, пенициллин, гентамицин, ципрофлоксацин, имипенем, азитромицин, котримоксазол, клиндамицин и линкомицин), были чувствительны к эфирному маслу, экстрагированному из лекарственного препарата C. виды удобрений. Мы рекомендовали использовать C. officinalis , выращенные в почве, обогащенной как химическими, так и биологическими удобрениями, в качестве основного подхода для синтеза и создания нового антибиотического препарата для лечения устойчивых штаммов MRSA в больнице.В соответствии с этим, продуманное назначение антибиотиков - еще один необходимый вариант предотвращения распространения штаммов MRSA.

Благодарности

Авторы выражают благодарность доктору Д. Ф. Сафарпур Дехкорди из Департамента гигиены и контроля качества пищевых продуктов Тегеранского университета, Иран, и весь персонал Центра исследований лекарственных и ароматических растений Исламского университета Азад в Шахрекорд, Иран за их важную техническую и клиническую поддержку.Настоящее исследование было поддержано Исламским университетом Азад в Шахрекорд, Иран (IAUSHK 2001394).

Список литературы

  1. Noskin GA, Rubin RJ, Schentag JJ, Kluytmans J, Hedblom EC, Smulders M, Lapetina E, Gemmen E. Бремя инфекций Staphylococcus aureus в больницах США: анализ общенациональной базы данных образцов стационарных пациентов за 2000 и 2001 гг. . Arch Intern Med 2005; 165: 1756-61.
    CrossRef
  2. Solberg CO. Распространение Staphylococcus aureus в больницах: причины и профилактика.Scand J Infect Dis2000; 32: 587-95.
    CrossRef
  3. Ли BY, Бейли Р.Р., Смит К.Дж., Мудер Р.Р., Стротмейер Е.С., Льюис Г.Дж., Уфберг П.Дж., Сонг Y, Харрисон Л.Х. Универсальный эпиднадзор за устойчивым к метициллину Staphylococcus aureus (MRSA) у взрослых при госпитализации: экономическая модель и анализ. Инфекционный контроль Hosp Epidemiol 2010; 31: 598-606.
    CrossRef
  4. Дэвид MZ, Daum RS. Связанный с сообществом метициллин-устойчивый золотистый стафилококк: эпидемиология и клинические последствия возникающей эпидемии.Clin Microbiol Rev2010; 23: 616-87.
    CrossRef
  5. Tverdek FP, Crank CW, Segreti J. Антибактериальная терапия метициллин-резистентного золотистого стафилококка в условиях интенсивной терапии. Crit Care Clin 2008; 24: 249-60.
    CrossRef
  6. Wielders CL, Fluit AC, Brisse S, Verhoef J, Schmitz FJ. Ген mecA широко распространен в популяции золотистого стафилококка. J Clin Microbiol 2002; 40: 3970-5.
    CrossRef
  7. Камеры ВЧ, Deleo FR. Волны сопротивления: золотистый стафилококк в эпоху антибиотиков.Nat Rev Microbiol2009; 7: 629-41.
    CrossRef
  8. Ся Дж, Гао Дж, Кокудо Н., Хасэгава К., Тан В. Устойчивость к антибиотикам и вирулентность метициллин-устойчивого золотистого стафилококка. Biosci Trends 2013; 7: 113-21.
  9. Камеры ВЧ. Метициллин-резистентный золотистый стафилококк. Механизмы устойчивости и последствия для лечения. Postgrad Med2001; 109: 43-50.
  10. Ансари С., Непал Х.П., Гаутам Р., Раямаджи Н., Шреста С., Упадхьяй Г., Ачарья А., Чапагейн М.Л. Угроза здоровью в Непале лекарственно-устойчивого золотистого стафилококка.BMC Infect Dis 2014; 14: 157.
    CrossRef
  11. Пан С.Ю., Чжоу С.Ф., Гао Ш., Ю З.Л., Чжан С.Ф., Тан М.К., Сун Дж.Н., Ма Д.Л., Хань Ю.Ф., Фонг В.Ф., Ко К.М. Новые взгляды на открытие лекарств из лекарственных растений: выдающийся вклад CAM в современную терапию. Evid Based Complement Alternat Med 2013; 2013: 627375.
    CrossRef
  12. Арора Д., Рани А., Шарма А. Обзор фитохимии и этнофармакологических аспектов рода Calendula. Pharmacogn Rev 2013; 7: 179-87.
    CrossRef
  13. Укия М., Акихиса Т., Ясукава К., Токуда Х., Сузуки Т., Кимура Ю.Противовоспалительное, противоопухолевое и цитотоксическое действие компонентов цветков календулы (Calendula officinalis). J Nat Prod 2006; 69: 1692-6.
    CrossRef
  14. Efstratiou E, Hussain AI, Nigam PS, Moore JE, Ayub MA, Rao JR. Противомикробная активность экстрактов лепестков календулы лекарственной в отношении грибов, а также грамотрицательных и грамположительных клинических патогенов. Дополнение Ther Clin Pract 2012; 18: 173-6.
    CrossRef
  15. Butnariu M, Coradini CZ. Оценка биологически активных соединений цветков календулы лекарственной с помощью спектрофотометрии.Chem Cent J2012; 6: 35.
    CrossRef
  16. Martins FS, da Conceição EC, Bandeira ES, Silva JO Junior, Costa RM. Влияние метода экстракции на восстановление рутина из Calendula officinalis L. (Asteraceae). Pharmacogn Mag 2014; 10: S569-73.
  17. 17. Pan C 1 , Zhan R, Ding P, Xu H. Влияние различных органических удобрений на рост и усвоение минеральных питательных веществ Morindar officinalis. Чжун Яо Цай 2002; 25: 699-701 ..
  18. Мохаммад Реза Хадж Сейед Хади *, Мохсен Абаргуэй Фаллах, Мохаммад Таги Дарзи.Влияние внесения азотных удобрений и биогумуса на урожай цветов и эфирное масло ромашки (Matricaria Chamomile L.). J ChemHealth Risks 2015; 5: 235–244
  19. Мураками К., Минамид В., Вада К., Накамура Е., Тераока Н., Ватанабе С. Идентификация устойчивых к метициллину штаммов стафилококков с помощью полимеразной цепной реакции. J Clin Microbiol 1991; 29: 2240-4.
  20. Британская фармакопея. Х. М. С. Офис. 2, Лондон, 1980: 109-110.
  21. Адамс РП. Идентификация компонентов эфирных масел методом газовой хроматографии / масс-спектроскопии.Иллинойс: Allured Publishing Corporation, 1995: 469.
  22. Институт клинических и лабораторных стандартов (CLSI), Стандарты эффективности тестирования чувствительности к противомикробным препаратам. Двадцать второе информационное приложение М100-С21. Уэйн Па: 2012.
  23. Токаджян С., Хаддад Д., Андраос Р., Хашва Ф., Арай Г. Токсины и устойчивость к антибиотикам у Staphylococcusaureus, выделенные из крупной больницы в Ливане. ISRN Microbiol 2011; 2011: 812049.
    CrossRef
  24. Virdis S, Scarano C, Cossu F, Spanu V, Spanu C, De Santis EP.Устойчивость к антибиотикам у Staphylococcus aureus и Coagulase Negative Staphylococci, выделенных от коз с субклиническим маститом. Vet Med Int 2010; 2010: 517060.
    CrossRef
  25. Udo EE, Al-Sweih N, Dhar R, Dimitrov TS, Mokaddas EM, Johny M, Al-Obaid IA, Gomaa HH, Mobasher LA, Rotimi VO, Al-Asar A. Наблюдение за устойчивостью к антибактериальным препаратам у Staphylococcus aureus, выделенных в Кувейте больницы. Med Princ Pract 2008; 17: 71-75.
    CrossRef
  26. Alghaithy AA, Bilal NE, Gedebou M, Weily AH.Носовое носительство и резистентность к антибиотикам изолятов Staphylococcusaureus у больничного и внебольничного персонала в Абхе, Саудовская Аравия. Trans R Soc Trop Med Hyg 2000; 94: 504-507.
    CrossRef
  27. Młynarczyk A, Młynarczyk G, uczak M, Grzesik A, Lewandowska M, Jeljaszewicz J. Устойчивость к антибиотикам штаммов Staphylococcusaureus, выделенных в двух разных больницах Варшавы. Med Dosw Mikrobiol 2001; 53: 217-225.
  28. Риджал К.Р., Пахари Н., Шреста Б.К., Непал АК, Паудель Б., Махато П., Скалко-Баснет Н.Распространенность метициллинрезистентного Staphylococcusaureus у школьников Покхары. Nepal Med Coll J 2008; 10: 192-195.
  29. Deng JJ, Zhu JN, Yang CL, Shu M, Xiao GG, Su M, Zhou W. Клиническое распределение и лекарственная устойчивость золотистого стафилококка, выделенного у госпитализированных детей. Сычуань Да Сюэ Сюэ Бао И Сюэ Бан 2013; 44: 159-161.
  30. Давари Панах Д., Фарахваш Ф. Влияние биологических и химических удобрений на урожай календулы лекарственной в тепличных условиях. J ноябрь, прикладная наука 2014; 3: 1435-1438
  31. Рафи Х, Мехрафарин А, Кадери А, Калате Яри С., Нагди Бади Х.Фитохимические, агрономические и морфологические реакции бархатцев (Calendula officinalis L.) на некорневое применение биостимуляторов (биоактивных аминокислотных соединений). J MedPlants 2013; 12: 48-61.
  32. Рахмани Н., Данешян Дж., Алиабади Фарахани Х. Влияние азотных удобрений и режимов орошения на урожай семян календулы (Calendula officinalis L.). J Agric Biotechnol Sustainable Dev 2009; 1: 024-028.
  33. Bielski S, Szwejkowska B. Влияние удобрения на развитие и урожайность календулы лекарственной (Calendula officinalis L.). Herba Polonica 2013; 59: 5-12.
    CrossRef
  34. Евдович Р., Тодорович Г., Костич М., Протич Р., Лекич С., Живанович Т., Секански М. Влияние местоположения и применения различных минеральных удобрений на урожай семян и качество календулы лекарственной (Calendula officinalis l.). Turk J FieldCrops 2013; 18: 1-7
  35. Араб А., Замани Г.Р., Сайяри М.Х., Асили Дж. Влияние химических и биологических удобрений на морфофизиологические свойства календулы (Calendula officinalis L.). Eur J Med Plants 2015; 8: 60-68.
    CrossRef
  36. Чакраборти GS. Противомикробная активность экстрактов листьев календулы лекарственной (линн.). J Herb Med Toxicol 2008; 2: 65-66.
  37. Фариа Р.Л., Кардосо Л.М., Акисуэ Дж., Перейра, Калифорния, Жункейра Дж.С., Хорхе А.О., Сантос Жуниор П.В. Противомикробная активность календулы лекарственной, камелии китайской и хлоргексидина в отношении прикрепления микроорганизмов к швам после удаления непрорезавшихся третьих моляров. J Appl Oral Sci 2011; 19: 476-82.
    CrossRef
  38. Бисса С, Бора А.Антибактериальный потенциал календулы. J Microbiol Antimicrobial 2011; 3: 51-54.
  39. Ригане Г., Бен Юнес С., Газгази Х., Бен Салем Р. Исследование биологической активности и химического состава календулы лекарственной, произрастающей в Тунисе. Int Food Res J 2013; 20: 3001-3007.
  40. Мулей Б.П., Хдабади СС, Банарасе Н.Б. Фитохимические компоненты и фармакологическая активность Calendula officinalis Linn (Asteraceae): обзор. Trop J Pharm Res 2009; 8: 455-465.
    CrossRef
  41. Cushnie TP, Lamb AJ.Антимикробная активность флавоноидов. Int J Antimicrob Agents 2005; 26: 343 56.
    CrossRef
  42. Шах Пратибха Дж., Уильямсон Манита Т. Антибактериальная и синергетическая активность метанольного экстракта лепестков календулы лекарственной на Klebsiella pneumoniae, совместно продуцирующей ESBL и бета-лактамазу AmpC. IntJCurrMicrobiolApp Sci 2015; 44: 107-117.
  43. Arora D, Rani A, Sharma A. Обзор фитохимии и этнофармакологических аспектов рода Calendula. Pharmacogn Rev2013; 7: 179-87.
    CrossRef
  44. Butnariu M, Coradini CZ.Оценка биологически активных соединений цветков календулы лекарственной с помощью спектрофотометрии. Chem Cent J 2012; 6: 35.
    CrossRef
  45. Фариа Р.Л., Кардосо Л.М., Акисуэ Дж., Перейра, Калифорния, Жункейра Дж. С., Хорхе А.О., Сантос Жуниор П.В. Противомикробная активность календулы лекарственной, камелии китайской и хлоргексидина в отношении прикрепления микроорганизмов к швам после удаления непрорезавшихся третьих моляров. J Appl Oral Sci 2011; 19: 476-82.

Добавить комментарий

Ваш адрес email не будет опубликован. Обязательные поля помечены *